УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ АДАПТАЦИИ И ДОРАЩИВАНИЯ КЛЮКВЫ БОЛОТНОЙ (VACCINIUM OXYCOCCOS L.), ПОЛУЧЕННОЙ СПОСОБОМ КЛОНАЛЬНОГО МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ, К УСЛОВИЯМ EX VITRO
Рубрики: АГРОНОМИЯ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация:
Цель исследования – усовершенствование технологии адаптации и доращивания посадочного материала клюквы болотной (Vaccinium oxycoccos L.) к условиям ex vitro. Исследование проводилось на базе РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева в 2024–2025 гг. Объекты исследования – растения клюквы болотной российских сортов (Краса Севера, Фомич), полученные методом клонального микроразмножения. Укоренившиеся in vitro микроклоны V. oxycoccos высаживали в мини-парники для адаптации. Выбор и подготовку субстрата, подготовку и культивирование растений проводили по общепринятым методикам. В качестве субстратов для укоренения использовали торф верхового типа (pH = 2,8–3,1), а также смеси торф + речной песок 3 : 1, торф + вермикулит 3 : 1, торф + агроперлит 3 : 1, торф + природный вулканический цеолит 3 : 1. Растения V. oxycoccos пересаживали в контейнеры объемом 1 и 2 л в I декаде июня и доращивали в условиях закрытого грунта. В течение 3 месяцев в конце каждой декады проводились биометрические измерения растений, а также устанавливалась их приживаемость к нестерильным условиям ex vitro. Наилучшие результаты адаптации растений-регенерантов V. oxycoccos к нестерильным условиям на 30-е сут получены на субстрате из смеси торфа с цеолитом 3 : 1 и смеси торфа с агроперлитом 3 : 1. Приживаемость растений V. oxycoccos составила 97–99 %. Сорт Фомич оказался несколько более устойчив к стрессовым условиям пересадки растений в горшки с большим объемом. Размер контейнера не оказывал существенного влияния на качество посадочного материала клюквы болотной V. oxycoccos исследуемых российских сортов.

Ключевые слова:
Vaccinium oxycoccos, клюква, адаптация, ex vitro, биометрические показатели, приживаемость клюквы, контейнерное доращивание
Список литературы

1. Debnath S.C., Goyali J.C. In vitro propagation and variation of antioxidant properties in micropropagated vaccinium berry plants – a review // Molecules. 2020. Vol. 25, N 4. Art. 788. DOI: 10.3390/ molecules25040788.

2. Макаров С.С., Кузнецова И.Б., Упадышев М.Т., и др. Особенности клонального микроразмножения клюквы болотной (Oxycoccus palustris Pers.) // Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51, № 1. С. 67–76. DOI:https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-1-67-76. EDN: https://elibrary.ru/YIWJCE.

3. Нечипоренко И.В., Акимова С.В., Казаков П.О. Особенности доращивания ex vitro растений клюквы болотной (Vaccinium oxycoccos L.) с закрытой корневой системой // Овощи России. 2023. № 5. С. 49–61. DOI:https://doi.org/10.18619/2072-9146-2023-5-49-61. EDN: https://elibrary.ru/BAXWRA.

4. Тумаева Т.А., Барковская Н.А. Оценка эффективности использования технологии клонального микроразмножения посадочного материала в питомниководстве // Техника и оборудование для села. 2025. № 4. С. 45–46. DOI:https://doi.org/10.33267/2072-9642-2025-4-45-46. EDN: https://elibrary.ru/CSJJJH.

5. Ghosh A., Igamberdiev A.U., Debnath S.C. Tissue culture-induced DNA methylation in crop plants: a review // Mol Biol Rep. 2021. Vol. 48, N 1. P. 823–841. DOI:https://doi.org/10.1007/s11033-020-06062-6.

6. Loyola-Vargas V.M., Ochoa-Alejo N. An introduction to plant tissue culture: advances and perspectives // Methods Mol Biol. 2018. Vol. 1815. P. 3–13. DOI:https://doi.org/10.1007/978-1-4939-8594-4_1.

7. Wikandari R., Manikharda, Baldermann S., et al. Application of cell culture technology and genetic engineering for production of future foods and crop improvement to strengthen food security // Bioengineered. 2021. Vol. 12, N 2. P. 11305–11330. DOI:https://doi.org/10.1080/21655979.2021.2003665.

8. Anjanappa R.B., Gruissem W. Current progress and challenges in crop genetic transformation // J Plant Physiol. 2021. Vol. 261. Art. 153411. DOI:https://doi.org/10.1016/j.jplph.2021.153411.

9. Dhungana S.A., Kunitake H., Niino T., et al. Cryopreservation of blueberry shoot tips derived from in vitro and current shoots using d cryo-plate technique // Plant Biotechnol (Tokyo). 2017. Vol. 34, N 1. P. 1–5. DOI:https://doi.org/10.5511/plantbiotechnology.16.1231b.

10. Marangelli F., Pavese V., Vaia G., et al. In vitro polyploid induction of highbush blueberry through de novo shoot organogenesis // Plants (Basel). 2022. Vol. 11, N 18. Art. 2349. DOI:https://doi.org/10.3390/plants11182349.

11. Макаров С.С. Черятова Ю.С., Чудецкий А.И. Опыт интродукции клюквы крупноплодной (Vaccinium macrocarpon Ait.) при выращивании в Московском регионе // Вестник КрасГАУ. 2025. № 4. С. 33–46. DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2025-4-33-46. EDN: https://elibrary.ru/EXLQVI.

12. Liaudanskas M., Šedbarė R., Janulis V. Determination of biologically active compounds and antioxidant capacity in vitro in fruit of small cranberries (Vaccinium oxycoccos L.) growing in natural habitats in Lithuania // Antioxidants (Basel). 2024. Vol. 13, N 9. Art. 1045. DOI:https://doi.org/10.3390/antiox13091045.

13. Šedbarė R., Janulis V., Pavilonis A., et al. Comparative Ш study: assessing phytochemical, antioxidant, antimicrobial, and anticancer properties of Vaccinium macrocarpon Aiton and Vaccinium oxycoccos L. fruit extracts // Pharmaceutics. 2024. Vol. 16, N 6. Art. 735. DOI:https://doi.org/10.3390/pharmaceutics16060735.

14. Павлова И.А., Гавриленко И.В., Матяш Ю.С., и др. Факторы эффективной адаптации растений винограда in vitro к условиям ex vitro // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2021. Т. 23, № 3. С. 226–232. DOI:https://doi.org/10.35547/IM.2021.30.22.003. EDN: https://elibrary.ru/SBRHOJ.

15. Sungurova N.R., Makarov S.S., Chudetsky A.I., et al. Adaptation features of kamchatka bilberry (Vaccinium praestans Lamb.) plants grown in vitro // Russian Forestry Journal. 2025. N 3. P. 121–131. DOI:https://doi.org/10.37482/0536-1036-2025-3-121-131. EDN: https://elibrary.ru/WYNPYM.

16. Перченко Н.А., Сергеева О.Н. Подбор оптимальных приемов для успешной адаптации и доращивания растений in vivo для массового производства посадочного материала жимолости с закрытой корневой системой // Аграрная Россия. 2024. № 1. С. 33–35. DOI:https://doi.org/10.30906/1999-5636-2024-1-33-35. EDN: https://elibrary.ru/GHAZPD.

17. Méndez-Hernández H.A., Loyola-Vargas V.M. Plant micropropagation and temporary immersion systems // Methods Mol Biol. 2024. Vol. 2827. P. 35–50. DOI:https://doi.org/10.1007/978-1-0716-3954-2_3.

18. Сундырева М.А., Ребров А.Н., Мишко А.Е., и др. Влияние концентрации сахарозы в питательной среде и слабых стрессовых воздействий на фотосинтетические показатели винограда при переводе из культуры in vitro в условия ex vitro // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2023. № 79. С. 108–127. DOI:https://doi.org/10.30679/2219-5335-2023-1-79-108-127. EDN: https://elibrary.ru/UJRHYL.

19. Макаров С.С., Чудецкий А.И., Черятова Ю.С., и др. Особенности адаптации микрорастений Rubus arctucus L. к условиям ex vitro и in vivo // Достижения науки и техники АПК. 2025. Т. 39, № 3. С. 45–50. DOI:https://doi.org/10.53859/02352451_2025_39_3_45. EDN: https://elibrary.ru/UBSAKS.

20. Макаров С.С., Самойленко З.А., Макарова Т.А., и др. Адаптация клюквы крупноплодной (Vaccinium macrocarpon Ait.) к условиям ex vitro с применением гидропонного метода // Вестник КрасГАУ. 2023. № 11. С. 104–112. DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2023-11-104-112. EDN: https://elibrary.ru/YSPSNS.

21. Mazurek M., Siekierzyńska A., Piechowiak T., et al. Comprehensive analysis of highbush blueberry plants propagated in vitro and conventionally // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 25, N 1. Art. 544. DOI:https://doi.org/10.3390/ijms25010544.

22. Schuchovski C., Sant'Anna-Santos B.F., Marra R.C., et al. Morphological and anatomical insights into de novo shoot organogenesis of in vitro 'Delite' Rabbiteye blueberries // Heliyon. 2020. Vol. 6, N 11. Art. e05468. DOI:https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2020.e05468.


Войти или Создать
* Забыли пароль?