УДК
632
ВАК
4 1.5.15 1.5 4.1.1 4.1.2
Ещё 10 Свернуть
4.1.3 4.1.4 4.1.5 4.2.1 4.2.2 4.2.3 4.2.4 4.2.5 4.3.3 4.3.5

СОРТОВЫЕ РАЗЛИЧИЯ В ВОСПРИИМЧИВОСТИ МЯГКОЙ ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ К ГРИБНОЙ ИНФЕКЦИИ СЕМЯН

Опубликовано в Вестник КрасГАУ · Страницы 118–129 · Рубрика: Агрономия
DOI: https://doi.org/10.36718/1819-4036-2026-6-118-129 · EDN: XAFGSX
Получено: 16.12.2025 Одобрено: 14.07.2026 Опубликовано: 16.07.2026
Цель исследования – определить сортовую специфику восприимчивости восьми районированных в Красноярском крае сортов мягкой яровой пшеницы к возбудителям грибной инфекции семян. Объекты исследования – сорта мягкой яровой пшеницы Канская, Свирель, Красноярская 12, Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80, Бейская. Зерно отличалось высокой распространенностью внутренней инфекции, которая в среднем по сортам составила 66,6 %. Инфекция была представлена фитопатогенными грибами Fusarium sporotrichioides Sherb. (возбудитель фузариоза колоса) и Bipolaris sorokiniana (Sacc.) Shoemaker (возбудитель корневой гнили, листовой пятнистости и «черного зародыша»). Средняя по сортам распространенность F. sporotrichioides составила 13,4 %, варьируя от 3 % у сорта Красноярская 12 до 20 % у сорта Новосибирская 31. При этом сорт Красноярская 12 статистически значимо (p < 0,05) уступал остальным сортам по распространенности F. sporotrichioides, в то время как статистически значимых различий между сортами Канская, Свирель, Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 м Бейская по данному показателю не выявлено. Средняя распространенность B. sorokiniana составила 53,3 %, варьируя от 0 % у сорта Красноярская 12 до 87 % у сорта Алтайская 70. По распространенности B. sorokiniana сорта образуют две четко обособленные группы. Первую группу составляют сорта Канская, Свирель и Красноярская 12 со средней по группе распространенностью 4,3 %. Вторую группу составляют сорта Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 и Бейская со средней по группе распространенностью 82,7 %. Сорт Красноярская 12 может рассматриваться как источник повышенной выносливости к F. sporotrichioides и B. sorokiniana, а сорта Канская и Свирель – как источник повышенной выносливости к B. sorokiniana.
мягкая яровая пшеница, грибная инфекция семян пшеницы, Fusarium sporotrichioides, Bipolaris sorokiniana, сортовая специфика пшеницы
Текст Список литературы

Введение. Пшеница является ведущей зерновой культурой в мире, селекционная работа по которой ведется постоянно и сохраняет свою актуальность. Селекция пшеницы направлена на повышение урожайности, адаптацию к различным условиям среды, улучшение качества семян и устойчивость к болезням и вредителям [1–3]. При возделывании пшеницы одной из проблем является происходящее в процессе вегетации заражение семян фитопатогенными грибами p.р. Fusarium [4–6] и Bipolaris [7, 8]. Эти грибы способны вызывать инфекционные заболевания у широкого спектра сельскохозяйственных растений, из зерновых культур им больше всего подвержена пшеница [9].

Заболевания, вызываемые грибами р. Fusarium, называются фузариозами. У пшеницы фузариоз может проявляться в виде корневой гнили, листовой пятнистости, поражения колоса и семян. Кроме экономических потерь, фузариозы могут приводить к ухудшению качества зерна и накоплению микотоксинов. Продуцируемые грибами р. Fusarium микотоксины способны вызывать нарушения работы сердечно-сосудистой, нервной систем, желудочно-кишечного тракта [10–13]. Например, содержание в зерне 0,1 мг/кг токсина Т-2, основными продуцентами которого являются F. sporotrichioides, F. langsethiae, F. acuminatum и F. poae, способно сделать его полностью непригодным для использования.

Грибы р. Bipolaris вызывают корневые гнили, листовые пятнистости, а также «черный зародыш» семян. Инфицирование семян этими патогенами приводит к снижению их качества и всхожести, а также накоплению микотоксинов. Один из микотоксинов, который может производиться грибами р. Bipolaris, является стеригматоцистин (СТЦ), обладает мутагенными, токсическими и тератогенными свойствами. Основным органом-мишенью является печень. При употреблении даже в малых дозах стеригматоцистин может способствовать развитию злокачественных опухолей печени и пищевода; кроме этого, он вызывает снижение иммунитета [15, 16].

Для борьбы с грибными инфекциями применяют фунгициды, однако селекция более устойчивых сортов – стратегический подход, так как химические средства не всегда способны обеспечивать полную защиту [17, 18]. Устойчивость сортов к инфекции является относительным признаком. При теплой и влажной погоде в период цветения количество устойчивых линий может снижаться, а сорта могут демонстрировать разную сортовую восприимчивость к данным патогенам. Сортовые различия в восприимчивости играют ключевую роль в стратегии защиты посевов и обеспечении продовольственной безопасности [19, 20].

Современный ассортимент сортов пшеницы различен по сортовой восприимчивости к грибным инфекциям семян. Сорта можно разделить на классы в зависимости типа устойчивости к данному заболеванию. А. Местерхази (Á. Mesterházy) еще в 1997 г. выделил пять классов по типу устойчивости: устойчивость к проникновению патогена в ткани растения, устойчивость к распространению патогена по колосу, устойчивость зерен к заражению патогеном, толерантность к инфекции, то есть способность растения сохранять урожайность при заражении, и устойчивость к накоплению микотоксинов [21, 22].

В России опубликованы многочисленные исследования по сортовой восприимчивости пшеницы к грибным инфекциям семян. Это и характеристика устойчивых сортов к фузариозу, и результаты многолетних наблюдений за устойчивостью сортов пшеницы в различных регионах, и результаты оценки сортов мягкой пшеницы на устойчивость к фузариозу колоса [23–25], и оценка сортов пшеницы различного происхождения с комплексной устойчивостью к фузариозу и другим болезням, и оценка сортовой восприимчивости пшеницы в Центральном, СевероЗападном, Южном и Сибирском федеральных округах, и исследования подходов защиты пшеницы от фузариоза, включая селекцию устойчивых сортов [26–28], и обзоры стратегий защиты пшеницы от фузариоза с акцентом на селекцию устойчивых сортов, и результаты многолетних испытаний сортов пшеницы с выявлениями сортов с повышенной устойчивостью к фузариозу колоса, и проведение сравнительной оценки сортов яровой пшеницы по устойчивости к B. sorokiniana, и изучение влияния агротехнологий на развитие гельминтоспориозной корневой гнили на сортах яровой пшеницы [29–31]. Однако данные по восприимчивости сортов пшеницы к грибным инфекциям в лесостепной зоне Красноярского края малочисленны [32, 33], хотя данная зона является одной из перспективных по возделыванию пшеницы [34]. Настоящая работа призвана расширить знания о сортовых различиях в восприимчивости пшеницы к грибным инфекциям семян в лесостепной зоне Красноярского края.

Цель исследования – определить сортовую специфику восприимчивости восьми районированных в Красноярском крае сортов мягкой яровой пшеницы к возбудителям грибной инфекции семян.

Объекты и методы. Объект исследования – зерно восьми сортов мягкой яровой пшеницы селекции Красноярского научно-исследовательского института сельского хозяйства – обособленного подразделения ФИЦ КНЦ СО РАН (Красноярский НИИ СХ): Свирель, Канская, Красноярская 12, Бейская, Курагинская 2; селекции Сибирского научно-исследовательского института растениеводства и селекции – филиала Федерального исследовательского центра Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (СИБ НИИ РС – филиал ИЦИГ СО РАН): Новосибирская 31; селекции Федерального Алтайского научного центра агробиотехнологий (ФАНЦА): Алтайская 70, Лидер 80. В исследовании использовали зерно урожая 2024 г., полученное в ОПХ «Минино» Емельяновского района (лесостепная зона Красноярского края).

Для выявления внутренней инфекции предварительно продезинфицированное зерно (100 зерен каждого сорта) раскладывали в чашки Петри на агаризованную среду Чапека – Докса [35]. Для предотвращения бактериального роста в среду добавляли ципрофлоксацин в количестве 5 мг/л. Инкубирование проводили в течение 7 сут при температуре (25 ± 1) °С в соответствии с ГОСТ Р 52325–2005 «Семена сельскохозяйственных растений. Сортовые и посевные качества. Общие технические условия». Видовую идентификацию выделенных из семян грибов проводили по культурально-морфологическим признакам [36, 37]. Статистическую значимость различий между сортами по распространенности инфекции определяли тестом χ2 с использованием пакета STATISTICA 10.

Результаты и их обсуждение. При визуальной оценке семян изучаемых сортов были выявлены семена с характерные признаками фузариоза и «черного зародыша» (рис. 1), у отдельных сортов такие семена составляли 90 %. В среднем, доля семян с признаками «черного зародыша» составила 53 % от общего числа проанализированных экземпляров.

Микробиологический анализ показал, что по распространенности внутренней инфекции семян сорта существенно различаются (рис. 2).

 

 

Рис. 1. Семена пшеницы: 1 – здоровые семена; 2 – с признаками «черного зародыша»; 3 – с признаками фузариоза

Wheat seeds: 1 – healthy seeds; 2 – with signs of "black germ";3 – with signs of Fusarium infection

 

 

Рис. 2. Семена пшеницы с разным уровнем внутренней инфекции после 7 сут инкубирования

на среде Чапека-Докса при температуре (25 ± 1) °С. 1 – Красноярская 12; 2 – Канская; 3 – Свирель; 4 – Бейская

Wheat seeds with varying levels of internal infection after 7 days of incubation on Czapek-Dox medium

at (25 ± 1)°C. 1 – Krasnoyarskaya 12; 2 – Kanskaya; 3 – Svirel; 4 – Beyskaya

 

 

Патогенный комплекс был представлен фитопатогенными грибами Fusarium sporotrichioides Sherb. (возбудитель фузариоза колоса) и Bipolaris sorokiniana (Sacc.) Shoemaker (возбудитель корневой гнили, листовой пятнистости и «черного зародыша») (рис. 3, 4).

 

 

 

Рис. 3. Конидии изолята B. sorokiniana, выделенного из изучаемых семян

Conidia of a B. sorokiniana isolate obtained from the seeds under study

 

 

Рис. 4. Микроконидии (слева) и макроконидии (справа) изолята F. sporotrichioides, выделенного из изучаемых семян

Microconidia (left) and macroconidia (right) of an *F. sporotrichioides* isolate obtained from the seeds under study

 

 

В среднем по сортам распространенность внутренней инфекции семян составила 66,6 %, при этом представители B. sorokiniana статистически значимо (p < 0,001) преобладали в патогенном комплексе. Так, если средняя по сортам распространенность F. sporotrichioides составила 13,4 %, варьируя от 3 % у сорта Красноярская 12 до 20 % у сорта Новосибирская 31, то средняя распространенность B. sorokiniana была 53,3 %, варьируя от 0 % у сорта Красноярская 12 до 87 % у сорта Алтайская 70. При этом в целом по сортам наблюдаются статистически значимые (p < 0,001) различия как по общей распространенности, так и по таксономическому составу семенной инфекции. Так, сорт Красноярская 12 статистически значимо (p < 0,05) уступал остальным сортам по распространенности F. sporotrichioides, в то время как статистически значимых различий между сортами Канская, Свирель, Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 м Бейская по данному показателю не выявлено. По распространенности B. sorokiniana сорта образуют две четко обособленные группы. Первую группу составляют сорта Канская, Свирель и Красноярская 12 со средней по группе распространенностью 4,3 %. Вторую группу составляют сорта Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 и Бейская со средней по группе распространенностью 82,7 % (рис. 5).

 

 

Рис. 5. Таксономический состав и распространенность семенной инфекции у исследуемых сортов, %

Taxonomic composition and prevalence of seed infection in the studied cultivars, %

 

 

Из восьми сортов Красноярская 12 продемонстрировала минимальную распространенность внутренней инфекции семян, максимальную устойчивость к возбудителям семенной инфекции. Следует отметить, что в 2023 г. в ОПХ «Минино» данный сорт также показал низкий уровень заражения семян как представителями р. Fusarium, так и к другим фитопатогенным грибам. На втором месте по устойчивости к инфекции семян находится сорт Канская, на третьем – сорт Свирель. Замыкают список по устойчивости сорта Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 и Бейская с распространенностью семенной инфекции в пределах 97–99 %, что в первую очередь объясняется их высокой чувствительностью к поражению B. sorokiniana. При этом наши данные по сорту Новосибирская 31 согласуются с результатами ранее проведенных исследований по сортовой восприимчивости яровой пшеницы к представителям р. Fusarium [38] и изучению таксономиического состава фитопатогенов в лесостепной зоне Красноярского края [39]. Во всех указанных работах сорт Новосибирская 31 идентифицирован как один из наименее устойчивых, или самый восприимчивый. Это подчеркивает необходимость ограничения возделывания данного сорта в зонах с высоким инфекционным фоном, проведения обязательного протравливания семян перед посевом и мониторинга фитосанитарного состояния посевов.

Заключение. Проведенные исследования показали высокие и статистически значимые различия между изучаемыми сортами по восприимчивости к семенной инфекции. На основе полученных результатов сорт Красноярская 12 можно рекомендовать как источник повышенной выносливости к F. sporotrichioides и B. sorokiniana, а сорта Канская и Свирель – как источник повышенной выносливости к B. sorokiniana. Следует также рекомендовать ограничить возделывание сортов Алтайская 70, Курагинская 2, Новосибирская 31, Лидер 80 и Бейская в районах с высоким инфекционным фоном, отдавая предпочтение сортам Красноярская 12, Канская и Свирель, либо применять усиленные меры защиты, такие как протравливание семян перед посевом, соблюдение севооборота, использование фунгицидов в период вегетации.

Можно также отметить существенные изменения в видовом составе доминирующих фитопатогенных грибов рода Fusarium, произошедшие в районе проведения исследований. Согласно работам 80-х гг. XX в., для данной местности были характерны F. avenaceum и F. gibbosum, он же F. acuminatum. Данные исследований 2001 и 2004 гг. фиксируют в этой зоне присутствие F. oxysporum и комплекса видов Fusarium oxysporum (FOSC), а также F. graminearum (в составе комплекса FSAMSC) [40–42]. Примечательно, что в более ранних работах [43] данные виды были типичны для зон тайги, подтайги и степи. Согласно публикации 2008 г., в рассматриваемой зоне доминировали представители комплексов видов F. tricinctum (FTSC) и F. sambucinum, (FSAMSC) [43]. Наши исследования показали абсолютное преобладание вида F. sporotrichioides, также относящегося к комплексу видов FSAMSC. Идентификация нами F. sporotrichioides согласуется с выводами исследователей [43–45], показавших, что для Сибири, наряду с другими комплексами видов р. Fusarium, характерно распространение именно представителей комплекса FSAMSC, в котором отмечены F. poae,  F. sibiricum, F. culmorum, а F. sporotrichioides по культурально-морфологическим и молекулярно-генетическим признакам встречается более чем в 70 % случаях изученных образцов [45]. Следует отметить, что F. sporotrichioides является продуцентом целого комплекса микотоксинов:  Т-2 и НТ-2 токсины, диацетоксискирпенол (DAS) и неосоланиол (NEO) [46]. С учетом выявленного доминирования F. sporotrichioides в лесостепной зоне Сибири, а также его повышенной опасности как продуцента микотоксинов, необходим регулярный мониторинг фитосанитарного состояния посевов и семенного материала, а также разработка целенаправленных мер борьбы с данным патогеном.

1. Ляпунова О.А. Селекция твёрдой пшеницы в Италии // Письма в Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019. Т. 5, № 1. С. 19–34. DOI:https://doi.org/10.18699/Letters2019-5-3. EDN: https://elibrary.ru/BHKILC.

2. Babalola K.O., Monacelli N., Gozzi M., et al. Genetic diversity and climate change adaptation in wheat: a systematic review of landraces, composite cross populations, and evolutionary populations // Frontiers in Sustainable Food Systems. 2025. Vol. 9. Art. 1504922. DOI:https://doi.org/10.3389/fsufs.2025. 1504922.

3. Мальчиков П.Н., Мясникова М.Г. Развитие селекции яровой твёрдой пшеницы в России (странах бывшего СССР), результаты и перспективы // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2023. Т. 27, № 6. С. 591–608. DOI:https://doi.org/10.18699/VJGB-23-71. EDN: https://elibrary.ru/BLYSRY.

4. Gebeyaw M. Review on: Impact of seed-borne pathogens on seed quality // American Journal of Plant Biology. 2020. Vol. 5, N 4. P. 77–81.

5. Alconada T.M., Moure M.C., Ortega L.M. Fusarium infection in wheat, aggressiveness and changes in grain quality: a review // Vegetos. 2019. Vol. 32, N 4. P. 441–449.

6. Kotowicz N.K., Frąc M., Lipiec J. The importance of Fusarium fungi in wheat cultivation – pathogenicity and mycotoxins production: a review // Journal of Animal and Plant Science. 2014. Vol. 21, № 2. P. 3326–3343.

7. Al‑Sadi A.M. Bipolaris sorokiniana‑induced black point, common root rot, and spot blotch diseases of wheat: a review // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2021. Vol. 11. Art. 584899.

8. Орина А.С., Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю., и др. Микромицеты Alternaria spp. и Bipolaris sorokiniana и микотоксины в зерне, выращенном в Уральском федеральном округе // Микология и фитопатология. 2020. Т. 54, № 5. С. 365–377. DOI:https://doi.org/10.31857/S0026364820050086. EDN: https://elibrary.ru/UREAXE.

9. Ганнибал Ф.Б., Гагкаева Т.Ю., Гомжина М.М., и др. Ассоциированные с пшеницей микромицеты и их значимость как возбудителей болезней в России // Вестник защиты растений. 2022. Т. 105, № 4. С. 164–180. DOI:https://doi.org/10.31993/2308–6459-2022-105-4-15508. EDN: https://elibrary.ru/KLHPMB.

10. Haidukowski M., Somma S., Ghionna V., et al. Deoxynivalenol and T-2 Toxin as Major Concerns in Durum Wheat from Italy // Toxins (Basel). 2022. Vol. 14, N 9. Art. 627. DOI:https://doi.org/10.3390/toxins14090627.

11. Gagkaeva T., Gavrilova O., Orina A., et al. Analysis of toxigenic Fusarium species associated with wheat grain from three regions of Russia: Volga, Ural, and West Siberia // Toxins. 2019. Vol. 11, N 5. Art. 252. DOI:https://doi.org/10.3390/toxins11050252. EDN: https://elibrary.ru/LOIBQD.

12. Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю., Орина А.С. Разнообразие грибов рода Fusarium и их микотоксинов в зерне из азиатской части России // Микология и фитопатология. 2022. Т. 56, № 3. С. 194–206. DOI:https://doi.org/10.31857/S0026364822030035. EDN: https://elibrary.ru/DOHXYT.

13. Bakker M.G., Brown D.W., Kelly A.C., et al. Fusarium mycotoxins: A trans‑disciplinary overview // Canadian Journal of Plant Pathology. 2018. Vol. 40, N 2. P. 161–171. DOI:https://doi.org/10.1080/0706 0661.2018.1433720.

14. Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю. Новые сведения о распространении на территории России гриба Fusarium langsethiae, продуцирующего Т‑2 и НТ‑2 токсины // Вестник защиты растений. 2020. Т. 103, № 3. С. 201–206. DOI:https://doi.org/10.31993/2308–6459-2020-103-3-13282. EDN: https://elibrary.ru/XTMMCY.

15. Берестецкий А.О., Далинова А.А., Дубовик В.Р., и др. Анализ и выделение вторичных метаболитов гриба Bipolaris sorokiniana различными методами хроматографии и спектр их биологической активности // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. Т. 56, № 5. С. 483–496. DOI:https://doi.org/10.31857/S0555109920050050. EDN: https://elibrary.ru/ZMIWHR.

16. Седова И.Б., Киселёва М.Г., Захарова Л.П., и др. Токсиколого‑гигиеническая характеристика микотоксина стеригматоцистина и методы его определения в пищевых продуктах // Гигиена и санитария. 2019. Т. 98, № 1. С. 105–117. DOI:https://doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-1-105-117. EDN: https://elibrary.ru/YWAHJJ.

17. Tang X., Yangjing G., Zhuoma G., et al. Biological characterization and in vitro fungicide screenings of a new causal agent of wheat Fusarium head blight in Tibet, China // Frontiers in Microbiology. 2022. Vol. 13. Art. 941734. DOI:https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.941734.

18. Гагкаева, Т.Ю., Орина А.С., Гаврилова О.П., и др. Характеристика сортов озимой пшеницы по устойчивости к фузариозу зерна // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018. Т. 22, № 6. С. 617–624.

19. Конкова, О.В., Костина М.И., Костин В.И Оценка устойчивости сортов мягкой пшеницы к Bipolaris sorokiniana в Нижневолжском регионе // Агрохимия. 2023. № 1. С. 82–88.

20. Zhang Y.A. Novel effector, CsSp1, from Bipolaris sorokiniana, is essential for colonization in wheat and is also involved in triggering host immunity // Mol. Plant Pathol. 2022. Vol. 23, N 1. P. 123–134. DOI:https://doi.org/10.1111/mpp.13155.

21. Шашко Ю.К. Методические аспекты оценки устойчивости пшеницы к фузариозу колоса в селекционном процессе // Земледелие и защита растений. 2016. № 5. С. 21–24. EDN: https://elibrary.ru/YXSPKF.

22. Mesterházy Á. Methodology of resistance testing and breeding against Fusarium head blight in wheat and results of the selection // Cereal Research Communications. 1997. Vol. 25. P. 631–637. DOI:https://doi.org/10.1007/BF03543801.

23. Gagkaeva T.Yu., Orina A.S., Gavrilova O.P., et al. Characterization of resistance of winter wheat varieties to Fusarium head blight // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018. Vol. 22, N 6. P. 685–692. DOI:https://doi.org/10.18699/VJ18.411. EDN: https://elibrary.ru/XYZCJF.

24. Гагкаева Т.Ю., Гаврилова О.П., Левитин М.М. Фузариоз зерновых культур // Защита и карантин растений. 2011. № 3. С. 12–16.

25. Жалнина Л.Д., Илюшко М.В., Клыков А.Г. Устойчивость сортов мягкой пшеницы Приморского НИИСХ к фузариозу колоса // Дальневосточный аграрный вестник. 2018. № 2. С. 32–38.

26. Коновалова И.В., Клыков А.Г., Муругова Г.А. Оценка устойчивости сортов пшеницы к фузариозу в условиях Дальнего Востока // Сельскохозяйственная биология. 2020. Т. 55, № 4. С. 789–800.

27. Левитин М.М., Иващенко В.Г., Шипилова Н.П., и др. Распространение и вредоносность фузариоза колоса на пшенице в России // Микология и фитопатология. 2004. Т. 38, вып. 5. С. 5–13.

28. Новожилов К.В., Левитин М.М. Интегрированная защита растений от болезней: фузариоз колоса зерновых культур // Вестник защиты растений. 2010. № 1. С. 3–12.

29. Соколов М.С., Глинушкин А.П., Торопова Е.Ю. Фузариоз колоса: стратегия защиты // Защита и карантин растений. 2016. № 5. С. 15–19.

30. Юрасова И.А., Гагкаева Т.Ю., Орина А.С. Устойчивость сортов пшеницы к фузариозу в условиях Центрального Черноземья // Вестник РАСХН. 2019. № 4. С. 45–49.

31. Конькова Э.А., Лящева С.В., Зеленева Ю.В. и др. Характеристика перспективных сортов пшеницы (Triticum aestivum L.), допущенных к возделыванию в Нижневолжском регионе, по устойчивости к возбудителям пиренофорозной и тёмно‑бурой пятнистости // Сельскохозяйственная биология. 2023. Т. 58, № 5. С. 852–863.

32. Кекало А.Ю., Немченко В.В., Заргарян Н.Ю., и др. Защита зерновых культур от болезней. — Куртамыш: Куртамышская типография, 2017. 172 с.

33. Хижняк С.В., Мучкина Е.Я. Сортовая специфика восприимчивости яровой пшеницы к токсикогенным грибам, влияющим на качество и экологическую безопасность зерна // Вестник КрасГАУ. 2014. № 10. С. 88–92.

34. Келер В.В., Овсянкина С.В., Щеклеин Д.М., и др. Сортовая специфика восприимчивости пшеницы к семенной инфекции в Красноярском крае // Вестник КрасГАУ. 2021. № 8. С. 3–10. DOI:https://doi.org/10.36718/1819–4036-2021-8-3-10. EDN: https://elibrary.ru/DTKWHB.

35. Мозговой С.С., Пантюхов И.В., Келер В.В. Экологическая пластичность сортов яровой пшеницы в лесостепи Красноярского края // Вестник КрасГАУ. 2020. № 9 (162). С. 121–128. DOI:https://doi.org/10.36718/1819–4036-2020-9-121-128. EDN FRKNID.

36. Кукушкина К.В. Влияние состава питательной среды на образование конидий грибами р. Fusarium // Вестник КрасГАУ. 2025. № 3. С. 52–61. DOI:https://doi.org/10.36718/1819‑4036‑2025‑3‑52‑61.

37. Leslie J.F., Summerell B.A. The Fusarium Laboratory Manual. Australia: Blackwell Publishing, 2006. 388 p.

38. Gerlach W., Nirenberg H. The genus Fusarium — a pictorial atlas // Mitteilungen aus der Biologischen Bundesanstalt für Land‑ und Forstwirtschaft Berlin‑Dahlem. Berlin; Hamburg: Parey, 1982. 406 p.

39. Кукушкина К.В. Определение сорта мягкой яровой пшеницы с низкой внутренней инфекцией // Фитосанитария. Карантин растений. 2024. № S4‑1. С. 42. EDN: https://elibrary.ru/JXYSIF.

40. Кукушкина К.В., Овсянкина С.В., Келер В.В., и др. Таксономический состав и распространённость фитопатогенных грибов на корнях мягкой яровой пшеницы в Канско‑Красноярской лесостепи // АгроЭкоИнфо. 2021. № 2. DOI:https://doi.org/10.51419/20212222. EDN: https://elibrary.ru/CVIZHA.

41. Чулкина В.А., Коняева Н.М., Кузнецова Т.Т. Борьба с болезнями сельскохозяйственных культур в Сибири. М.: Россельхозиздат, 1987. 252 с.

42. Шипилова Н.П., Иващенко В.Г. Систематика и диагностика грибов рода Fusarium на зерновых культурах. СПб.: Всероссийский научно‑исследовательский институт защиты растений РАСХН, 2008. 84 с. EDN: https://elibrary.ru/TUTOFH.

43. Малиновская Л.С., Пирязева Е.А., Кислякова О.С. Выявление доминантных видов рода Fusarium в зерне из различных регионов РФ // Успехи медицинской микологии. 2004. № 3. С. 278–280.

44. Литовка Ю.А. Ареал и видовой состав грибов рода Fusarium в наземных экосистемах Средней и Южной Сибири. В сб.: Международный микологический форум «Современная микология в России» (Москва, 13–14 апреля 2015 г.). М., 2015. Т. 4. С. 227.

45. Литовка Ю.А. Видовой состав и представленность грибов рода Fusarium на зерновых культурах (пшеница и ячмень), выращиваемых в условиях Средней Сибири // Вестник КрасГАУ. 2017. № 6 (129). С. 140–149.

46. Kokkonen M., Jestoi M., Laitila A. Mycotoxin production of Fusarium langsethiae on cereal‑based substrates // Mycotoxin Research. 2012. Vol. 28, N 1. P. 25–35. DOI:https://doi.org/10.1007/s12550‑011‑0113‑8.

Войти или Создать
* Забыли пароль?