сотрудник с 01.01.1993 по 01.01.2026
Красноярск г.
аспирант с 01.01.2021 по 01.01.2025
Россия
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.4 Садоводство, овощеводство, виноградарство и лекарственные культуры
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.1 Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.2.5 Разведение, селекция, генетика и биотехнология животных
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 631.423 Количественный анализ почвы
УДК 631.816.3 Способы внесения удобрений
Цель исследования – оценить влияние микроводорослей Chlorella vulgaris и Arthrospira platensis на содержание и запасы подвижных гумусовых веществ в агрочерноземе при возделывании яровой пшеницы. Исследования провели в полевом опыте в 2022–2023 гг. в учебно-опытном хозяйстве Красноярского государственного аграрного университета «Миндерлинское». Объект исследования – агрочернозем глинисто-иллювиальный типичный, яровая пшеница сорта Новосибирская 31, биопрепараты на основе микроводоросли Chlorella vulgaris и цианобактерии Arthrospira platensis в виде суспензии и гранул. Сезонная динамика процессов трансформации водорастворимых и щелочегидролизуемых соединений гумуса в 0–40 см слое агрочернозема имела различный характер и протекала с переменной интенсивностью (Сv = 6–35 %) в зависимости от формы биопрепаратов и гидротермических условий вегетационных сезонов. Максимальное пополнение пула подвижного водорастворимого углерода до 30–29 мг С/100 г выявлено в 0–20 см слое агрочернозема при фолиарной обработке вегетирующих посевов яровой пшеницы Chlorella vulgaris и внесении гранул Arthrospira platensis в почву. Опрыскивание растений суспензией Chlorella vulgaris определило близкий с контрольным вариантом уровень содержания щелочегидролизуемого углерода в 0–20 см слое почвы (561–557 мг С/100 г). На вариантах опыта с применением суспензии и гранулы Chlorella vulgaris отмечалось более активное образование гидролизуемых соединений углерода в 20–40 см слое агрочернозема (543–535 мг С/100 г). Максимальная доля запасов стабильного гумуса выявлена на вариантах опыта с применением гранул Arthrospira platensis (89–90 %), что обусловлено снижением запасов подвижных соединений гумуса. Показатель силы влияния изученных форм биопрепаратов с микроводорослями на содержание водорастворимого углерода в агрочерноземе при возделывании яровой пшеницы оценивался величиной 24–12 %, щелочегидролизуемого углерода – 40–38 %.
Chlorella vulgaris, Arthrospira platensis, гумус, подвижные гумусовые вещества, запасы гумуса, агрочернозем
1. Мамеев В.В., Ториков В.Е., Нестеренко О.А. Изменение баланса гумуса в полевых севооборотах и мероприятия по его увеличению // Вестник Брянской ГСХА. 2023. № 6. С. 9–17. DOI:https://doi.org/10.52691/2500-2651-2023-100-6-9-17. EDN: https://elibrary.ru/NDPVGC.
2. Карабутов А.П., Ступаков А.Г. Мониторинг гумусного состояния чернозема типичного при различной интенсивности использования пашни // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2018. № 7. С. 28–33. EDN: https://elibrary.ru/YNVGBV.
3. Чернова О.В., Алябина И.О., Безуглова О.С., и др. Современное состояние гумусированности пахотных черноземов настоящих степей (на примере Ростовской области) // Юг России: экология, развитие. 2020. Т. 15, № 4. С. 99–113. EDN: https://elibrary.ru/VRXXZZ.
4. Кураченко Н.Л., Коваленко О.В., Казюлин Л.Ф. Влияние микроводорослей на посевные качества семян гороха и яровой пшеницы // Экологический Вестник Северного Кавказа. 2020. Т. 16, № 1. С. 35–39. EDN JRUNPU.
5. Кураченко Н.Л., Абкумова Н.В. Действие биопрепаратов на основе культуры микроводоросли Chlorella vulgaris на продуктивность томата // Плодородие. 2024. № 2 (137). С. 65–70. DOI:https://doi.org/10.25680/S19948603.2024.137.17. EDN: https://elibrary.ru/SNJASC.
6. Чурсин А.И., Незванова К.В. Методы борьбы с деградацией почв в РФ // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. № 6-1. С. 88–91. EDN: https://elibrary.ru/VVVXCB.
7. Доценко К.А., Федулов Ю.П. Видовой состав альгофлоры агроценозов Кубани // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2017. № 134. С. 1177–1194. DOI:https://doi.org/10.21515/1990-4665-134-095. EDN: https://elibrary.ru/VVADKX.
8. Abreu A.P., Martins R., Nunes J. Emerging Applications of C. sp. and Spirulina (Arthrospira) sp. // Bioengineering (Basel). 2023. Vol. 10. P. 955. DOI:https://doi.org/10.3390/bioengineering10080955.
9. Лукьянов В.А., Стифеев А.И. Агроэкологические особенности одноклеточных фотосинтезирующих организмов в условиях Центрального черноземья // Инновации в АПК: проблемы и перспективы. 2016. № 1. С. 60–68. EDN: https://elibrary.ru/YUMJLX.
10. Uysal O., Uysal F.O., Ekinci K. Evaluation of microalgae as microbial fertilizer // European Journal of Sustainable Development. 2015. N 4. P. 77–82.
11. Nichols K. Microalgae as a beneficial soil amendment // Soil science from the university of Maryland in 2003. April 2020. P. 22.
12. Kumar J., Singh D., Tyagi M.B., et al. Chapter 16 – Cyanobacteria: Applications in biotechnology. In: Cyanobacteria: from Basic Science to Applications. 2019. P. 327–346.
13. Chatterjee A., Singh S., Agraval C., et al. Role of algae as a biofertilizer. In: Algal Green Chemistry Recent Progress in Biotechnology. 2017. P. 189–200.
14. Казюлин Л. Ф., Кураченко Н.Л. Изменение гумусного состояния агрочернозема под действием удобрений // Вестник КрасГАУ. 2025. № 4. С. 125–135. DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2025-4-125-135. EDN: https://elibrary.ru/HKUXUU.
15. Кураченко Н.Л., Бопп В.Л. Режим нитратного азота в черноземе при возделывании многолетних трав // Аграрный научный журнал. 2022. № 9. С. 29–33. DOI:https://doi.org/10.28983/asj.y2022i9pp29-33. EDN: https://elibrary.ru/SFVBFU.
16. Власенко О.А. Запасы легкоминерализуемого органического вещества при возделывании пропашных кормовых культур в Красноярской лесостепи // Вестник КрасГАУ. 2017. № 9. С. 157–165. EDN: https://elibrary.ru/ZITVPV.
17. Кураченко Н.Л. Гумусовые вещества в формировании агрофизических свойств почв Красноярской лесостепи. Красноярск: Красноярский государственный аграрный университет, 2019. 143 с. EDN: https://elibrary.ru/NQFNQJ.
18. Власенко О.А. Динамика углерода подвижного гумуса в агрочерноземе при возделывании яровой пшеницы с помощью ресурсосберегающих технологий // Вестник КрасГАУ. 2015. № 9. С. 60–66. EDN: https://elibrary.ru/UJKGBD.
19. Tiwari O.N., Bhunia B., Mondal A., et al. System metabolic engineering of exopolysaccharide-producing cyanobacteria in soil rehabilitation by inducing the formation of biological soil crusts: A review // J. Clean. Prod. 2019. N 211. P. 70–82.
20. Redmile-Gordon M., Gregory A.S., White R.P., et al. Soil organic carbon, extracellular polymeric substances (EPS), and soil structural stability as affected by previous and current land-use // Geoderma. 2020. Vol. 363. Art. 114143.
