сотрудник с 01.01.2021 по 01.01.2025
Щелково, г. Москва и Московская область, Россия
сотрудник
г. Москва и Московская область, Россия
сотрудник с 01.01.2018 по 01.01.2025
Россия
сотрудник с 01.01.2006 по 01.01.2025
г. Москва и Московская область, Россия
сотрудник с 01.01.1979 по 01.01.2025
г. Москва и Московская область, Россия
ВАК 4.1.1 Общее земледелие и растениеводство
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.4 Садоводство, овощеводство, виноградарство и лекарственные культуры
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.1 Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 636.018 Биологические основы разведения и выращивания животных
Цель исследований провести сравнительное изучение заморожено-оттаянного семени племенных быков молочного и комбинированного направлений продуктивности. Задачи: оценить качественные показатели криоконсервированного семени быков в трех временных точках: сразу после оттаивания, через 1 и 3 ч после оттаивания; изучить уровень фрагментации ДНК сперматозоидов у быков молочных и комбинированных пород. Объект исследований – сперма быков-производителей племенных предприятий Российской Федерации. Для изучения были отобраны образцы криоконсервированного семени (n = 87) быков молочных пород (голштинской и ярославской), а также комбинированных пород (симментальской и костромской). Исследовали подвижность сперматозоидов, сохранность структуры ДНК сразу после оттаивания, через 1 и 3 ч после оттаивания. Cразу после оттаивания содержание сперматозоидов с прямолинейно-поступательным движением составило (48,27 ± 1,896) % для быков молочных пород и (46,04 ± 1,771) % для комбинированных пород. Через 3 ч количество прогрессивно-подвижных сперматозоидов уменьшилось до (16,05 ± 1,263) % для молочных пород и до (12,66 ± 2,829) % для комбинированных. Более высокая фрагментация ДНК обнаружена в сперме быков-производителей молочного направления продуктивности с показателями: момент хвоста (Tail Moment) – 0,291 ± 0,012 и длина кометы (Comet Length) – 27,786 ± 0,042, а быки комбинированных пород отличались меньшими значениями поврежденности ДНК (момент хвоста – 0,091 ± 0,024, длина кометы – 25,663 ± 0,088). В изученной нами выборке быки комбинированного направления уступали быкам молочного направления продуктивности по выживаемости сперматозоидов. Быки молочного направления продуктивности отличались более высокими значениями большинства параметров, характеризующих поврежденность ДНК, в сравнении с быками комбинированных пород. Эти межпородные различия следует учитывать при селекционно-племенной работе и разработке технологий криоконсервации спермы.
быки-производители, качество спермы быков, сперматозоиды, ДНК-фрагментация, вспомогательные репродуктивные технологии
1. Roche J.R., Burke C.R., Crookenden M.A., et al. Fertility and the transition dairy cow // Reproduction, Fertility and Development. 2018. N 30. Р. 85–100. DOI:https://doi.org/10.1071/RD17412.
2. Hasler J.F. Forty years of embryo transfer in cattle: a review focusing on the journal Theriogenology, the growth of the industry in North America, and personal reminisces // Theriogenology. 2014. Vol. 81, N 1. Р. 152–169. DOI:https://doi.org/10.1016/j.theriogenology2013.09.010.
3. Pardede B.Р., Supriatna I., Yudi Y., et al. Decreased bull fertility: age-related changes in sperm motility and DNA fragmentation. In: Е3S Web Conf. The 1st International Conference on Veterinary, Animal, and Environmental Sciences (ICVAES 2019). 2020. Vol. 151. DOI:https://doi.org/10.1051/e3sconf/202015101010.
4. Иолчиев Б.С., Шмидт А.В., Луконина О.Н., и др. Дисперсия хроматина сперматозоидов быков-производителей в зависимости от возраста // Животноводство и кормопроизводство. 2024. Т. 107, № 4. С. 255–265. DOI:https://doi.org/10.33284/2658-3135-107-4-255.
5. Нарышкина Е.Н. Вариабельность показателя оплодотворяющей способности семени быков-производителей голштинской породы в племенных и товарных стадах // Пермский аграрный вестник. 2021. № 4 (36). С. 124–133. DOI:https://doi.org/10.47737/2307-2873_2021_36_124. EDN: https://elibrary.ru/DNXBTP.
6. Холодова Л.В. Анализ оплодотворяющей способности семени быков-производителей разных генотипов. В сб.: Национальная научно-практическая конференция с международным участием «Актуальные проблемы интенсификации развития животноводства». Брянск: Брянский ГАУ, 2022. С. 23–32. EDN: https://elibrary.ru/GDUYUE.
7. Evenson D.P. Sperm Chromatin Structure Assay (SCSA®) for Fertility Assessment // Current protocolsю 2022. Vol. 2, N 8. P. e508. DOI:https://doi.org/10.1002/cpz1.508.
8. Sharma R., Iovine C., Agarwal A., et al. TUNEL assay – Standardized method for testing sperm DNA fragmentation // Andrologia. 2020. Vol. 53. Р. 53. DOI:https://doi.org/10.1111/and.13738.
9. Esteves S.C., Zini A., Coward R.M., et al. Sperm DNA fragmentation testing: Summary evidence and clinical practice recommendations // Andrologia. 2021. Vol. 53, N 2. P. e13874. DOI:https://doi.org/10.1111/and.13874.
10. Amor Н., Zeyad A., Alkhaled Y., et al. Relationship between nuclear DNA fragmentation, mitochondrial DNA damage and standard sperm parameters in spermatozoa of fertile and sub-fertile men before and after freeze-thawing procedure // Andrologia. 2018. Vol. 50, N 5. P. e12998. DOI:https://doi.org/10.1111/and.12998.
11. Mohammadi Z., Tavalaee M., Gharagozloo P., et al. Could high DNA stainability (HDS) be a valuable indicator of sperm nuclear integrity? // Basic Clin. Androl. 2020. Vol. 30. Р. 12. DOI:https://doi.org/10.1186/s12610-020-00110-8.
12. Horta F., Catt S., Ramachandran P., et al. Female ageing affects the DNA repair capacity of oocytes in IVF using a controlled model of sperm DNA damage in mice // Hum Reprod 2020. № 35. Р. 529–544. DOI:https://doi.org/10.1093/humrep/dez308.
13. Wang B., Li Zh., Wang Ch., et al. Zygotic G2/M cell cycle arrest induced by ATM/Chk1 activation and DNA repair in mouse embryos fertilized with hydrogen peroxide-treated epididymal mouse sperm // PLoS One. 2013. Vol. 8. P. e73987. DOI:https://doi.org/10.1371/journal.pone.0073987.
14. Morrell J.M., Valeanu A.S., Lundeheim N., et al. Sperm quality in frozen beef and dairy bull semen // Acta Vet Scand. 2018. Vol. 60. P. 41. DOI:https://doi.org/10.1186/s13028-018-0396-2.
15. Сollins A., Møller P., Gajski G., et al. Measuring DNA modifications with the comet assay: a compendium of protocols // Nature Protocols. 2023. Vol. 18, N 3. DOI:https://doi.org/10.1038/s41596-022-00754-y.
