с 01.01.2006 по настоящее время
Благовещенск, Амурская область, Россия
аспирант с 01.01.2024 по настоящее время
сотрудник
сотрудник
сотрудник
ВАК 4.1.1 Общее земледелие и растениеводство
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.4 Садоводство, овощеводство, виноградарство и лекарственные культуры
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.2.5 Разведение, селекция, генетика и биотехнология животных
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 619 Сравнительная патология. Ветеринария
УДК 616-001 Повреждения. Травмы. Травматология
УДК 636.92 Кролики
ГРНТИ 68.41 Ветеринария
ОКСО 36.05.01 Ветеринария
ОКСО 36.06.01 Ветеринария и зоотехния
ББК 48 Ветеринария
ТБК 5623 Ветеринария
Цель исследования – изучить патоморфологические изменения внутренних органов у кроликов при лечении ожоговой болезни неинвазивным электромагнитным воздействием. Экспериментальные исследования проводили в условиях учебного вивария факультета ветеринарной медицины, зоотехнии и биотехнологий ФГБОУ ВО Дальневосточного ГАУ в 2024 г. на 24 беспородных кроликах, возрастом 1,5 года, средней массой 3,2 кг. После моделирования ожоговых ран площадью до 5 % по отношению к массе тела животного (размер 5,0 см) животных разделили на 2 группы по 12 кроликов. В первой опытной группе кролики лечение не получали, обработка ран проводилась только 0,9 % раствором NaCl, без использования дополнительных медикаментозных средств; во второй группе обработка ран проводилась также 0,9 % раствором NaCl, но при этом еще применяли электромагнитное воздействие один раз в день по 30 мин – при получении ожога, на 3-й, 5-й, 8-й,12-й, 17-й, 21-й, 26-й день. У всех животных в обеих группах обнаружены признаки ожоговой токсемии. Гибель кроликов в первой опытной группе наступила в результате паралича центральной нервной системы на фоне развития острого сепсиса вследствие интоксикации организма продуктами распада тканей, указывающих на развитие тяжелой формы ожоговой токсемии, которая привела к 100 % гибели. Во второй опытной группе у животных, получавших аппаратное неинвазивное электромагнитное воздействие по предложенной схеме, на фоне ярко выраженной интоксикации организма, проявляющейся токсическим поражением печени, почек, а также других внутренних органов и систем, падежа не наблюдалось и патологические процессы протекали менее выражено. Данная схема лечения ожоговой болезни позволила обеспечить 100 % выживаемость животных, что указывает на положительный эффект аппарата.
ожоговая болезнь, кролики, физиотерапия, электромагнитное воздействие, моделирование раны
Введение. Ожоговая травма известна как самая травматичная рана среди кожных заболеваний, влекущая за собой глубокие патофизиологические изменения различных функций органов и систем организма, в частности центральной нервной системы, сердечно-сосудистой, дыхательной, мочеполовой, кроветворных систем, нарушение обменных процессов, поражение желудочно-кишечного тракта, печени, развитие синдрома десиминированного внутрисосудистого свертывания крови, эндокринные расстройства и т. д. При поражении большой площади поверхности кожного покрова ожоги могут превратиться в системную проблему, вызывая полиорганную недостаточность и смерть животных [1–4].
В настоящее время для терапии ожоговых ран предложено большое количество (более 1000) препаратов и методов лечения, включающих дифференцированную терапию, с учетом глубины поражения, стадии раневого процесса, локализации поражения и других факторов [5–11]. При этом важной задачей в лечении ожогов является активация отторжения некротических тканей, адсорбция токсического отделяемого, содержащего продукты микробного и тканевого распада, с использованием медикаментозных препаратов с различным механизмом действия, обладающих антимикробной, протеолитической активностью и адсорбционными свойствами, а также используются раневые покрытия различного типа [12–17].
Несмотря на широкий спектр лечебных мероприятий по лечению ожогов у животных, особенности лечебной тактики отработаны в недостаточной степени и в настоящее время требуют усовершенствования, что является актуальной задачей. Лечение ожогов является сложным и дорогостоящим процессом, который всегда должен быть своевременным и комплексным, так как они могут привести к серьезным последствиям, вплоть до летального исхода. Поэтому поиск и применение новых схем лечения ожоговых болезней у животных является актуальным направлением.
Цель исследования – изучить патоморфологические изменения внутренних органов у кроликов при лечении ожоговой болезни неинвазивным электромагнитным воздействием.
Задачи: провести патолого-анатомическое исследование кожного покрова и внутренних органов кроликов и определить патоморфологические изменения при ожоговой болезни; оценить состояние кожного покрова и внутренних органов при ожоговой болезни и ее лечении неинвазивным электромагнитным воздействием.
Объекты и методы. Экспериментальные исследования проводили в условиях учебного вивария факультета ветеринарной медицины, зоотехнии и биотехнологий ФГБОУ ВО Дальневосточного ГАУ в 2024 г. Опыт проводили на 24 беспородных кроликах, возрастом 1,5 года, средней массой 3,2 кг. Животные содержались при строгом соблюдении требований к содержанию их в вивариях.
Животным моделировали ожоговые раны степени IIIа с последующим рассечением кожи и внедрением в рану инфекционного агента (земля) с дальнейшим наложением повязки для создания анаэробных условий и развития процессов нагноения с целью создания естественных полевых условий загрязнения раны. После моделирования ожоговых ран кожного покрова площадь их по отношению к массе тела животного составила 4,0 % (размер 5,0 см). В дальнейшем животных разделили на 2 группы: в первой опытной группе было 12 кроликов, которые лечение не получали, обработка ран проводилась только 0,9 % раствором NaCl, без использования дополнительных медикаментозных средств; во второй группе также было 12 кроликов, обработка ран проводилась 0,9 % раствором NaCl с совместным воздействием аппаратом неинвазивной электромагнитной терапии сразу же после моделирования раны, на 3-й, 5-й, 8-й,12-й,17-й, 21-й, 26-й день эксперимента. Схема исследований представлена в таблице.
Схема лечения ожоговых инфицированных ран
Treatment scheme for infected burn wounds
|
Группа |
Кол-во животных |
Схема опыта |
|
Опытная группа 1 |
12 |
Обработка ран раствором 0,9 % NaCl, без использования дополнительных медикаментозных средств |
|
Опытная группа 2 |
12 |
Обработка ран раствором 0,9 % NaCl, без использования дополнительных медикаментозных средств и аппаратное лечение один раз в день по 30 мин – при получении ожога, на 3-й, 5-й, 8-й,12-й, 17-й, 21-й, 26-й день |
Использовали аппарат неинвазивной электромагнитной терапии «ТОР» по ВЕМР.941523. 001ТУ, производства АО «Концерн ГРАНИТ» (Россия), регистрационное удостоверение № РЗН 2021/15459. Аппарат зарегистрирован как медицинское изделие 23 сентября 2021 г.
Вскрытие трупов погибших животных и проведение патолого-анатомических исследований в период эксперимента проводились в первой опытной группе по мере гибели животных, во второй опытной группе согласно запланированному периоду исследований – по 3 головы на 8-й и 21-й день.
При проведении научных исследований придерживались требований биоэтики согласно Национальным «Общим этическим принципам экспериментов на животных», соответствующим положению «Европейской конвенции о защите позвоночных животных, которые используются для экспериментальных и других научных целей» от 18 марта 1986 г., а также рекомендаций Коллегии Евразийской экономической комиссии № 33 от 14 ноября 2023 г. «О руководстве по работе с лабораторными (экспериментальными) животными при проведении доклинических (неклинических) исследований». Исследования проведены с разрешения локального этического комитета ФГБОУ ВО Дальневосточный ГАУ (протокол № 1 от 06.05.2024).
Результаты и их обсуждение. В первой опытной группе наблюдался 100 % падеж поголовья в период с 4-го по 8-й день эксперимента, поэтому вскрытие трупов животных в данной группе было проведено в день их гибели для патолого-анатомической диагностики причины смерти. Во второй опытной группе падежа животных не наблюдалось, поэтому по запланированному графику на 8-й и 21-й дни эксперимента был произведен убой трех кроликов для диагностики течения патологического процесса в органах животных в период лечения ожоговой болезни.
При наружном осмотре трупов кроликов первой опытной группы выявлено, что на позвоночнике в области лопаток ожоговые раны были увеличены в размере на 1,5 см, а у некоторых особей – на 3,3 см, их края разъедены гнойным содержимым, глубина ран в среднем от 0,3 до 0,6 см. У некоторых животных раны были влажные, мокнущие, покрытые большим количеством гнойных масс, их края неровные, кожный покров на границе раны легко снимался вместе с волосом. В центральной части этих ран образованы углубления, в которых хорошо просматривались мышечные волокна, имеющие цвет и консистенцию вареного мяса с примесью гноя (рис. 1, а). У других животных раны не такие глубокие (затрагивают только все слои кожного покрова), покрыты коркой грязно-коричневого цвета, при снятии которой просматривается небольшое количество гнойного содержимого (рис. 1, б).
|
б |
|
а |
Рис. 1. Ожоговые раны у кроликов первой опытной группы: а – мокнущие; б – с образованием сухой корочки
Burn wounds in rabbits of the first experimental group: а – weeping; б – with the formation of a dry crust
При плановой аутопсии на восьмой день эксперимента при наружном осмотре у кроликов второй опытной группы, где применяли электромагнитное излучение аппаратом «ТОР», выявлено, что ожоговые раны меньше в размере на 0,53 см, их края были ровные, покрыты плотной сухой коркой коричневого цвета, мягкие ткани на месте ожога плотные и суховатые (рис. 2).
Рис. 2. Внешний вид ожоговой раны у кроликов
второй опытной группы на восьмой день эксперимента
The appearance of a burn wound in rabbits
of the second experimental group on the eighth day of the experiment
При внутреннем осмотре павших животных в первой опытной подкожная жировая клетчатка умеренно выражена, мышечная ткань бледно-розового цвета, суховата. В подкожной клетчатке в области спины вокруг места ожога резко выражена инъекция сосудов и множество мелких очагов абсцесса (рис. 3, а). Мягкие ткани вокруг ожога воспалены, гиперемированы, отечны, грязного красного цвета, некротизированы, подкожная жировая ткань в этой области отсутствует (рис. 3, б, в).
|
в |
|
б |
|
а |
Рис. 3. Состояние подкожной клетчатки и мышечной ткани у кроликов
первой опытной группы в области ожога при снятии кожного покрова:
а – инъекция сосудов и множественные абсцессы в подкожной клетчатке;
б, в – некроз мышечной ткани в области ожога
The condition of subcutaneous tissue and muscle tissue in rabbits of the first experimental group
in the burn area during skin removal: a – vascular injection and multiple abscesses in the subcutaneous tissue; б, в – necrosis of muscle tissue in the burn area
При осмотре органов грудной полости обнаружен венозный застой и отек в обеих долях легких с признаками краевой компенсаторной эмфиземы. Общая гипертрофия сердца с множественными точечными кровоизлияниями на эпикарде вдоль венечной борозды. В полостях предсердий и желудочков вместе с рыхлосвернувшимися кровяными сгустками темно-вишневого цвета обнаружены белые сгустки, заполнившие аорту и венозную полую вену, это указывает, что у животного был очень длительный период смерти. Миокард серовато-красного цвета (цвета вареного мяса), дряблый, на разрезе соотношение толщины стенки правого желудочка к левому 1 : 7 (в норме 1 : 3). Клапаны и струны сердца утолщены, плотные, серо-белого цвета, не смыкаются (клапанный эндокардит) (рис. 4).
При осмотре брюшной полости у одного кролика в первой опытной группе обнаружен разрыв мочевого пузыря и 150 мл мутной жидкости желтовато-соломенного цвета, с примесью белых включений и обрывков ткани слизистой оболочки мочевого пузыря.
При осмотре печени обнаружен токсический гепатоз, дискинезия желчевыводящих путей, холангит, острый катаральный холецистит. Поджелудочная железа увеличена в размере, грязного серо-розового цвета, гиперемирована, структура органа сохранена, резко выражена инъекция сосудов (острый панкреатит).
Селезенка неравномерно окрашена, от красного до темно-вишневого цвета, дряблая, увеличена, капсула напряжена, края закруглены, на разрезе фолликулярный рисунок резко выражен, при разрезе паренхимы соскоб умеренный (спленит), под капсулой обнаружены красные инфаркты (рис. 5).
Почки увеличены, дряблой консистенции, неравномерно окрашены от темно-вишневого до светло-коричневого цвета, под капсулой множественные точечные кровоизлияния и мелкие единичные очаги абсцессов размером с просяное зерно (рис. 6).
|
б |
|
а |
Рис. 4. Инъекция сосудов и точечные кровоизлияния на эпикарде,
токсический клапанный эндокардит у кроликов первой опытной группы:
а – точечные кровоизлияния; б – клапанный аппарат утолщен,
неэластичный, отложение фибрина на клапане
Injection of vessels and pinpoint hemorrhages on the epicardium,
toxic valvular endocarditis in rabbits of the first experimental group:
a – pinpoint hemorrhages; б – the valve apparatus is thickened, not elastic, fibrin deposition on the valve
Рис. 5. Инфаркты в селезенке у кролика первой опытной группы при ожоговой болезни
Infarctions in the spleen of a rabbit of the first experimental group with burn disease
|
б |
|
а |
Рис. 6. Патолого-анатомические изменения в почках у кроликов первой опытной группы:
а – точечные кровоизлияния в корковом слое почек; б – неравномерная окраска почек
Pathological changes in the kidneys of rabbits of the first experimental group:
а – pinpoint hemorrhages in the cortex of the kidneys; б – uneven coloring of the kidneys
Мочевой пузырь переполнен, занимает пространство практически всей брюшной полости, его стенка перерастянута, напряжена, просвечивается, через нее хорошо просматривается содержимое (рис. 7).
Рис. 7. Переполненный мочевой пузырь кроликов первой опытной группы
с инъекцией сосудов серозного покрова мочевого пузыря
Overfilled urinary bladder of rabbits of the first experimental group
with injection of vessels of the serous cover of the urinary bladder
Содержимое мочевого пузыря желтовато-соломенного цвета, мутное, с обрывками тканей слизистой оболочки и большим количеством белых хлопьев (белок), у некоторых животных моча с примесью крови (рис. 8). Слизистая оболочка мочевого пузыря истончена, местами отсутствует (некротический цистит). Моча через мочевыводящие пути не выделяется.
|
б |
|
а |
Рис. 8. Содержимое мочевого пузыря кроликов первой опытной группы:
а – содержимое мочевого пузыря; б – истонченная стенка мочевого пузыря
Contents of the urinary bladder of rabbits of the first experimental group:
a – contents of the urinary bladder; б – thinned wall of the urinary bladder
В кишечнике обнаружен острый серозно-катаральный энтероколит. На всем протяжении серозного покрова кишечника сильно выражена инъекция сосудов, наблюдался серозный лимфаденит брыжеечных лимфоузлов. В желудке – катарально-геморрагический эрозивный гастрит. Головной мозг в состоянии отека, сосуды твердой мозговой оболочки и тканей головного мозга сильно инъецированы, рисунок извилин сглажен. В мозговых желудочках большое количество отечной жидкости светло-розового цвета.
При внутреннем осмотре планово умерщвленных кроликов во второй опытной группе выявлено, что их подкожная жировая клетчатка была хорошо выражена, мышечная ткань бледно-розового цвета. В подкожной клетчатке инъекция сосудов в области раны была не такой интенсивной, как у кроликов первой опытной группы, при этом хорошо выражена жировая ткань бледно-розового цвета (рис. 9), это указывает, что у животных хоть и была сильнейшая интоксикация на фоне ожоговой болезни, но они потребляли корм и обильно пили воду в отличие от кроликов первой опытной группы, которые частично или полностью отказывались от корма и воды.
При осмотре мышечной ткани в области ожога выявлено, что она слабо гиперемирована, отечна, розового цвета, ее целостность сохранена (рис. 10).
Рис. 9. Инъекция сосудов подкожной клетчатки
и хорошо выраженная жировая ткань у кроликов второй опытной группы
Injection of subcutaneous tissue vessels and well-defined adipose tissue
in rabbits of the second experimental group
Рис. 10. Мышечная ткань у кроликов второй опытной группы под ожоговой поверхностью
Muscle tissue in rabbits of the second experimental group under the burn surface
При осмотре грудной полости у кроликов второй опытной группы легкие находились в состоянии венозного застоя и имели менее интенсивное проявление патологического процесса. Сердце было, так же как и у кроликов первой опытной группы, гипертрофировано с резко выраженной инъекцией сосудов эпикарда, но отсутствовали кровоизлияния.
При осмотре брюшной полости у кроликов второй опытной группы также обнаружены токсические явления со стороны печени, но в отличие от животных первой опытной группы проходимость желчного протока была сохранена.
Поджелудочная железа не увеличена, светло-розового цвета, структура органа сохранена, выражена инъекция сосудов. Селезенка неравномерно окрашена, от красного до темно-вишневого цвета, дрябловатая, слегка увеличена, на разрезе фолликулярный рисунок умеренно выражен, при разрезе паренхимы соскоб умеренный (спленит).
Почки увеличены, мягковатой консистенции, темно-вишневого цвета, капсула снимается легко, граница между мозговым и корковым слоями сглажена, на разрезе стекает красного цвета жидкость, соскоб обильный (венозный застой) (рис. 11).
Мочевой пузырь умеренно заполнен, через стенку пузыря просматривалось мутное содержимое желто-соломенного цвета, содержащее большое количество белых хлопьев, проходимость мочевыводящих путей не нарушена (рис. 12).
Рис. 11. Почки кроликов второй опытной группы при ожоговой болезни
Kidneys of rabbits of the second experimental group with burn disease
Рис. 12. Инъекция сосудов серозного покрова мочевого пузыря кроликов второй опытной группы
Injection of vessels of the serous cover of the urinary bladder of rabbits of the second experimental group
Кишечник в состоянии острого серозно-катарального энтероколита, брыжеечные лимфоузлы в состоянии серозного лимфаденита, сосуды брыжейки сильно инъецированы, в желудке серозно-катаральный гастрит. Сосуды твердой мозговой оболочки и тканей головного мозга сильно инъецированы, рисунок извилин сглажен.
Таким образом, гибель животных первой опытной группы наступила в результате паралича центральной нервной системы на фоне развития острого сепсиса вследствие интоксикации организма продуктами распада тканей. Во второй же опытной группе у животных на восьмой день исследований хоть и была ярко выраженная интоксикация организма при течении ожоговой болезни, но падежа не наблюдалось, и патологические процессы протекали менее интенсивно и выраженно, что указывает на положительный эффект воздействия аппарата «ТОР».
Во второй опытной группе на 21-й день исследований выявлено: на месте ожоговой раны у 4 из 9 кроликов наблюдалась полная регенерация кожного покрова, а у двух кроликов на этом участке выявлено прорастание шерстного покрова (рис. 13, а, б).
При плановой аутопсии трех кроликов второй опытной группы на 21-й день исследований патоморфологические признаки ожоговой болезни во внутренних органах были выражены в виде дистрофических изменений в печени, почках, миокарде, общей гипертрофии сердца.
|
б |
|
а |
Рис. 13. Состояние кожного покрова у кроликов второй опытной группы
при ожоге степени IIIа на 21-й день исследований:
а – полная регенерация кожи; б – регенерация кожи с прорастанием шерстного покрова
Skin condition in rabbits of the second experimental group with a IIIa degree burn
on the 21st day of the study: a – complete skin regeneration; б – skin regeneration with growth of fur
При патолого-анатомическом исследовании у всех животных в обеих группах обнаружены признаки ожоговой токсемии. В литературных источниках указано, что данное патологическое состояние длится до появления инфекции в ранах от 3 до 12 дней, чаще – 8–9 дней, которая возникает вследствие поступления в кровь продуктов распада тканей, подвергшихся ожогу. При этом в организме образуются как неспецифические токсины (гистамин, серотонин, простагландины, продукты гемолиза), так и специфические ожоговые токсины (гликопротеиды с антигенной специфичностью, «ожоговые» липопротеиды и токсические олигопептиды). Все это сопровождается токсическим поражением печени и почек, анемией, лейкоцитозом, ацидозом. При больших площадях ожога развиваются олигурия, анурия, уремия и другие системные поражения [1, 4, 18].
Подобную картину мы наблюдали при проведении наших исследований. Клинически у животных в первой опытной группе наблюдалась сильнейшая интоксикация с паралитическими явлениями и дальнейшей 100 % гибелью. Тогда как клинические признаки ожоговой болезни у кроликов второй опытной группы были не так сильно выражены, в частности паралитических явлений не наблюдалось, животные ели корм и обильно пили воду. Патолого-анатомически у всех животных проявились признаки системного воспалительного процесса и сильнейшей интоксикации.
Заключение. Вследствие моделирования вторично инфицированной ожоговой раны степени IIIа у кроликов развивалась тяжелая форма ожоговой болезни с сильнейшей интоксикацией с проявлением паралитических явлений и массовой 100 % гибелью животных. В результате при ожоговой болезни наблюдались такие патоморфологические признаки, как миокардиодистрофия, токсический клапанный эндокардит, тотальный отек легких, венозный застой в легких, почках, печени и других внутренних органах с резко выраженной инъекцией сосудов и множественными кровоизлияниями на серозных покровах, токсический гепатоз, холангит с дискинезией желчевыводящих путей, острый катаральный холецистит, нефрит с множественными кровоизлияниями, септический спленит с инфарктами, некротический цистит, ангидремия. Ожоговая поверхность на кожном покрове у кроликов первой опытной группы на момент гибели (4–8-й день) превышала первоначальные размеры на 1,5–3,3 см, раны имели мокнущий характер с обильным гнойным содержимым, кожный покров по периферии ран отслаивался с образованием подкожных карманов.
При плановой аутопсии кроликов, получавших лечение неинвазивным электромагнитным воздействием, также обнаружены признаки ожоговой токсемии, но с менее выраженными патоморфологическими признаками: отсутствовали паралич, септические явления, инфаркты. Диаметр ожоговых ран на кожном покрове у кроликов второй опытной группы при плановой аутопсии (на 8-й день) уменьшился на 0,53 см, они были покрыты плотной сухой коркой, коричневого цвета (струп). На 21-й день у 4 из 9 кроликов наблюдалась полная регенерация кожного покрова на месте ожоговой раны, а у 2 – прорастание шерстного покрова на месте моделированных ожоговых ран, что указывает на положительный терапевтический эффект неинвазивного электромагнитного воздействия аппаратом «ТОР» по предложенной схеме лечения ожогов степени IIIа.
1. Золотухина В.А., Безрук Е.Л. Патолого-анатомическая картина при ожоговой токсемии у крыс в эксперименте. В сб.: Международная научно-практическая конференция, посвященная 110-летию со дня рождения профессора, доктора ветеринарных наук Г.С. Мастыко «Ветеринарная хирургия: от истока к современности». 3–5 ноября 2022. Витебск: Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины, 2022. С. 56–59. EDN: https://elibrary.ru/PILJSB.
2. Золотухина В.А., Безрук Е.Л. Характеристика эндотоксемии при разных способах лечения экспериментальных ожогов у крыс // Международный вестник ветеринарии. 2022. № 4. С. 440–444. DOI:https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.440. EDN: https://elibrary.ru/VBBDIG.
3. Zubkova N.V., Chernigova S.V., Chernigov Yu.V., et al. Morphological changes in the tissue structures after thermal burns on the background of using DermaRM wound dressing // La Prensa Medica Argentina. 2019. Vol. 105, N 9. P. 521–525. EDN: https://elibrary.ru/GEAAHB.
4. Shnyakina T.N. Bezina N.M., Shcherbakov N.P., et al. Morphological studies in the treatment of experimental burn injuries of the second and third degrees in dogs // International Transaction Journal of. Engineering, Management and Applied Sciences and Technologies. 2020. Vol. 11, N 14. Р. 11A14H. DOI:https://doi.org/10.14456/ITJEMAST.2020.275.
5. Богданов C.Б., Каракулев А.В., Афанасов И.М., и др. Особенности раннего хирургического лечения пациентов с глубокими ожогами с применением биологических раневых покрытий // Инновационная медицина Кубани. 2024. Т. 9, № 3. C. 54–60. DOI:https://doi.org/10.35401/2541-9897-2024-9-3-54-60. EDN: https://elibrary.ru/NBMWUT.
6. Мельников В.В., Концевая С.Ю. Разработка методов лечения ожоговой болезни III степени у животных (экспериментальная часть). В сб.: XXIX Международная научная конференция «Наука России: цель и задачи»; 5 декабря 2021. Екатеринбург, 2021. С. 6–10. DOI:https://doi.org/10.18411/sr-05-12-2021-01. EDN: https://elibrary.ru/LUXZQF.
7. Чернигова С.В., Зубкова Н.В., Чернигов Ю.В., и др. Эффективность применения раневого покрытия «DermaRM» у животных с термическими ожогами // Вестник Омского ГАУ. 2019. № 2 (34). С. 131–139. EDN: https://elibrary.ru/MEJGJB.
8. Емельянова А.М., Стяжкина С.Н., Федоров В.Г. Случай лечения термического ожога 3 степени у пациента с дисплазией соединительной ткани // Дневник казанской медицинской школы. 2019. № 2 (24). С. 63–65. EDN: https://elibrary.ru/DRHKJA.
9. Емельянова А.М., Стяжкина С.Н., Федоров В.Г., и др. Современные методы лечения гнойных и ожоговых ран // Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». 2020. № 1 (43). С. 27–34.
10. Кулемин М.Э., Чернова А.А., Стяжкина С.Н., и др. Местное лечение гнойно-воспалительных заболеваний мягких тканей препаратами «Ронколейкин» и «Димексид» // Academy. 2019. №1 (40). С. 75–76. EDN: https://elibrary.ru/YSZEBV.
11. Попов А.А., Асадулаев М.С., Арцимович И.В., и др. Возможности применения частотно-модулированного сигнала электрического поля для обработки ожогов и ран // Скорая медицинская помощь. 2019. Т. 20, № 4. С. 71–75. DOI:https://doi.org/10.24884/2072-6716-2019-20-4-71-75. EDN: https://elibrary.ru/OMYJHW.
12. Karppinen S.M., Heljasvaara R., Gullberg D., et al. Toward understanding scarless skin wound healing and pathological scarring // F1000Research. 2019. Vol. 8. P. 787. DOI:https://doi.org/10.12688/f1000research.18293.1.
13. Jiji S., Kadirvelu K., Udhayakumar S., et al. Thymol enriched bacterial cellulose hydrogel as effective material for third degree burn wound repair // International Journal of Biological Macromolecules. 2019. Vol. 122. P. 452–460. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.10.192. EDN: https://elibrary.ru/YDCABI.
14. Шепелева В.М., Тугбаева О.Г., Емельянова А.М., и др. Применение иммуномодуляторов в системной терапии ожоговых ран: клинический случай // Modern science. 2020. № 4-1. С. 294–297. EDN: https://elibrary.ru/JWFQXS.
15. Юнусов О.Т., Карабаев Х.К., Сайдуллаев З.Я., и др. Современный подход к лечению пациентов с глубокими ожогами // Достижения науки и образования. 2019. № 11 (52). С. 75–78. EDN: https://elibrary.ru/WBCNUS.
16. Мельников В.В., Концевая С.Ю. Лечение термических ожогов у животных с применением секретома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК) (экспериментальное исследование). В сб.: Международная научная конференция «Горинские чтения. Инновационные решения для АПК», 14–15 марта 2023. Т. 2. Майский: Белгородский государственный аграрный университет имени В.Я. Горина, 2023. С. 144–145. EDN: https://elibrary.ru/WHSNDC.
17. Zhenikhova N.I., Korch M.A., Shakirov V.E., et al. Pathomorphogenesis of Thermal Injury in Animals. In: BIO Web Conferences. 2024. Vol. 108. Article Number 03005. DOI:https://doi.org/10.1051/bioconf/202410803005.
18. Shnyakina T.N., Shcherbakov N.P., Bryukhanchikova N.M., et al. Experience in treatment of thermal burns in dogs. E3S Web Conferences. 2021. Vol. 282. Article Number 03021. DOI:https://doi.org/10.1051/e3sconf/ 202128203021.
