Введение. Подрод Вишня (Prunus subg. Cerasus (Mill.) A.Gray) содержит около 50 видов и в основном распространен в умеренных и субтропических регионах Северного полушария [1]. Вишня ценится за скороплодность, урожайность и съедобные плоды, богатые биологически активными веществами [2–5]. Плоды вишни содержат витамины группы В, А, С, Е, триптофан, фолиевые кислоты и пектиновые вещества, а по количеству катехинов и суммарному содержанию Р-активных веществ могут превосходить плоды яблони [6, 7]. Добавление вишни в рацион питания человека способствует снижению образования тромбов за счет наличия в химическом составе оксикумаринов, оказывающих антикоагулянтное действие на кровь [7]. Сочетание этих качеств позволяет отнести вишню к одной из наиболее важных для растениеводства культур на территории России.На сегодняшний день наиболее перспективными для промышленных посадок являются сорта вишни, полученные на основе гибридизации C. vulgaris Mill. с другими видами, например С. fruticosa (Pall.) G. Woron. или C. maakii (Rupr.) Erem. et Simag [8–11]. Привлечение других видов в скрещивание позволило создать низкорослые культивары, устойчивые к болезням и абиотическим факторам окружающей среды, которые отличаются экологической пластичностью и пригодностью к интенсивным технологиям выращивания. Это делает актуальным их размножение и скорейшее внедрение в широкое использование.Одним из экономически эффективных методов получения сортового посадочного материала вишни является технология клонального микроразмножения [12]. Первые работы по микроразмножению C. vulgaris и C. fruticosa проведены в 70–80-х гг. XX в. [13, 14]. Позднее исследователями рассмотрено влияние многих факторов культивирования in vitro на органогенез представителей Cerasus [13]. Некоторые авторы отмечают сильное влияние генотипа растения на регенерационную способность эксплантов. Различия в морфогенетическом потенциале наблюдают не только у разных видов одного рода, но и между сортами, относящимися к одному виду [12, 15, 16]. Поэтому для успешного культивирования сортов вишни in vitro важен индивидуальный подбор минеральной основы питательной среды, регуляторов роста и условий культивирования [17].Рост тканей и органов растений in vitro обусловлен наличием макро- и микроэлементов в составе питательной среды. В свою очередь, одним из ключевых элементов питания, участвующим в синтезе белков, нуклеиновых кислот и хлорофилла, является азот. Доступность данного элемента непосредственно влияет на развитие регенеранта. Наиболее часто используемыми питательными средами для клонального микроразмножения растений считаются Murashige-Skoog (1962) и Quorin and Lepoivre (1977), основное различие которых заключается в соотношении солей азота [12, 18]. Помимо минеральной основы питательной среды на органогенез влияют и регуляторы роста. Цитокинины, применяемые на этапе собственно микроразмножения, стимулируют деление клеток, их дифференциацию и таким образом повышают коэффициент размножения культуры. Высокоэффективным для культивирования растений in vitro является цитокинин 6-бензиламинопурин (6-БАП) [19]. 6-БАП является регулятором роста, подходящим для размножения многих культур, однако в ряде работ показано угнетающее действие 6-БАП на ткани экспланта при его длительном воздействии или высоких концентрациях в питательной среде [20]. мТ – ароматический цитокинин, производное от бензиладенина. Данный регулятор роста в меньшей степени накапливается в тканях растения, чем другие цитокинины, за счет чего снижается число морфологических и физиологических нарушений [21, 22].Подбор оптимального ауксина на этапе укоренения не менее важен, чем поиск эффективного цитокинина на этапе микроразмножения. Ауксины активируют рост корней у основания микропобегов, что в дальнейшем может повышать процент приживаемости регенерантов в условиях ex vitro. Гетероауксин (β-индолилуксусная кислота (ИУК)) – наиболее распространенный на сегодняшний день фитогормон для индукции ризогенеза [23]. Однако ИУК является нестабильным соединением, легко окисляется и разрушается под действием ультрафиолета, что снижает его эффективность в случае культивирования in vitro трудноукореняемых растений. Индолилмасляная кислота (ИМК) представляет собой искусственно синтезированный ауксин, который менее подвержен разложению, за счет чего дольше сохраняется в питательной среде и воздействует на ткани экспланта [24].Этап адаптации регенерантов к условиям ex vitro является наиболее критическим этапом в технологии клонального микроразмножения. Укорененные в условиях in vitro растения характеризуются более высоким процентом приживаемости по сравнению с микропобегами без корней [25]. В то же время для повышения экономической эффективности технологии для некоторых культур можно совмещать этапы укоренения и адаптации [26].Цель исследования – усовершенствование технологии клонального микроразмножения гибридных сортов вишни на этапах собственно микроразмножения, укоренения и адаптации.Задачи: установить влияние генотипа и минеральной основы питательной среды на регенерационный потенциал гибридных сортов вишни на этапе собственно микроразмножения; определить влияние генотипа, условий культивирования, минерального и гормонального составов питательной среды на укореняемость микропобегов изучаемых генотипов; оценить влияние генотипа и состояния корневой системы у регенератов на приживаемость растений в условиях ex vitro.Объекты и методы. Исследования проводили в 2023–2024 гг. в лаборатории биотехнологии растений Федерального государственного бюджетного учреждения науки Главного ботанического сада им. Н.В. Цицина Российской академии наук (ГБС РАН). В качестве объектов были использованы экспланты сортов, выведенных на основе C. vulgaris и С. fruticosa (Pall.) G. Woron. (‘Carmine Jewel’, ‘Valentine’, ‘Cupide’), а также C. vulgaris и C. maakii (‘Памяти Левандовского’) из коллекции in vitro лаборатории биотехнологии растений ГБС РАН.На этапе собственно микроразмножения микропобеги изучаемых сортов высаживали на питательные среды по прописям Murashige-Skoog (MS) и Quoirin-Lepoivre (QL) с полной концентрацией макросолей и уменьшенной в два раза (½MS и ½QL) и добавлением 0,5 мг/л 6-бензиламинопурина 6-БАП. В качестве контроля использовали питательную среду MS.Для выявления оптимального источника цитокинина применяли (6-БАП) и мета-тополин (мТ) в концентрациях 3,0 и 0,5 мг/л соответственно. В качестве минеральной основы питательной среды использовали макросоли по прописи QL.Через 30 дней культивирования у эксплантов подсчитывали число микропобегов, измеряли их высоту и рассчитывали коэффициент размножения.На этапе укоренения микропобеги вишни переносили на питательные среды ½MS и ½QL с добавлением различных ауксинов: ИМК и ИУК в концентрации 0,5 мг/л. При культивировании поддерживали температуру 25 °C, фотопериод 16/8 и освещенность 1500 Лк.Микропобеги сорта ‘Carmine Jewel’ высаживали на питательную среду ½MS с добавлением 1,0 мг/л ИМК и подвергали световому и/или температурному стрессу в течение 7 дней для стимулирования ризогенеза, а после 23-го дня переносили в условия культуральной комнаты. Схема опыта представлена в таблице 1.  Таблица 1Режимы культивирования микропобегов сорта ‘Carmine Jewel’на этапе укоренения (2023, 2024 гг.)Cultivation regimes for microshoots of the ‘Carmine Jewel’ at the rooting stage (2023, 2024) Продолжительность культивированияУсловия культивированияВариант опытаАБВГ7 днейОсвещенность, Лк50050015001500Температура, °C1525152523 дняОсвещенность, Лк1500Температура, °C25  Через 30 дней после высадки микропобегов на питательную среду для укоренения замеряли показатели: число корней, длина корней, рассчитывали процент укоренившихся микропобегов.На этапе адаптации регенеранты с корнями и без корней изучаемых сортов вишни высаживали в субстрат, состоящий из нейтрального торфа и перлита в соотношении 1 : 1. При высадке основание микропобега опудривали препаратом «Корневин».Через 30 дней адаптации растений к условиям ex vitro учитывали процент выживших регенерантов и длину прироста растений.Эксперименты проводили в трех повторностях, по 10 эксплантов в каждой для каждого варианта среды. Обработку результатов проводили с помощью программы SPSS statistics. Для оценки значимости влияния минеральных основ питательных сред, регуляторов роста и условий укоренения на показатели эксплантов сортов вишни использовали дисперсионный анализ ANOVA (ANalysis of VAriance) с множественным ранговым критерием Дункана при уровне значимости p < 0,05. Различными буквами обозначены варианты, имеющие значимые различия по критерию Дункана.Результаты и их обсуждениеЭтап собственно микроразмножения. Генотип растения является одним из факторов, определяющих морфогенетический потенциал культуры в условиях in vitro.В ходе двухфакторного дисперсионного анализа установлено существенное влияние генотипа на число побегов и коэффициент размножения сортов вишни (рис. 1).    Рис. 1. Влияние генотипа на число микропобегов и коэффициент размножения эксплантов вишни на этапе собственно микроразмноженияThe influence of genotype on the number of microshoots and the multiplication coefficient of sour cherry explants  Экспланты сортов ‘Carmine Jewel’ и ‘Valentine’ статистически не различаются по морфометрическим показателям и характеризуются максимальными числом микропобегов (3,2–3,4 шт.) и коэффициентом размножения 6,2–6,5. У сорта ‘Cuiped’ отмечены средние морфометрические показатели (число побегов (2,8 ± 0,6) шт.; коэффициент размножения 5,6 ± 1,2), а у Памяти Левандовского – минимальные (число побегов (1,9 ± 0,7) шт.; коэффициент размножения 3,2 ± 1,2). Такая разница в морфогенетическом потенциале между генотипами может быть объяснена тем, что при создании сорта Памяти Левандовского использовали C. maakii, а остальные изучаемые сорта получены на основе C. fruticosa. Определение оптимального минерального состава питательной среды имеет большое значение при клональном микроразмножении. В ходе дисперсионного анализа установлено существенное влияние концентрации макросолей в составе питательной среды на морфометрические показатели эксплантов вишни (рис. 2).    Рис. 2. Влияние минерального состава питательной среды и его концентрации на морфометрические показатели эксплантов вишниThe influence of mineral composition of the nutrient medium and it’s concentrationon morphometric parameters of sour cherry explants  Экспланты, высаженные на питательные среды ½QL и ½MS, не различались по числу микропобегов и коэффициенту размножения. При уменьшении концентрации макросолей QL у эксплантов снизилось число микропобегов в 1,5 раза и коэффициент размножения в 1,7 раза. Культивирование эксплантов вишни на питательной среде с пониженной концентрацией макросолей MS приводило к снижению числа микропобегов у эксплантов вишни в 1,5 раза и коэффициента размножения в 2 раза. Полученные результаты отличаются от работ других авторов, в которых уменьшение концентрации макросолей в составе питательной среды способствовало увеличению коэффициента размножения [27, 28]. Полная концентрация макросолей в составе питательной среды способствовала активному органогенезу. Морфометрические показатели эксплантов, культивируемых на питательных средах MS и QL, существенно не отличались друг от друга: число микропобегов – 3,3 шт., а коэффициент размножения варьировал от 6,7 до 7,2. Некоторые исследователи также наблюдали преимущество как MS, так и QL при размножении различных представителей Prunus [29, 30].В ходе дисперсионного анализа установлена существенная разница по высоте микропобегов в зависимости от концентрации минеральной основы питательной среды (рис. 3).    Рис. 3. Влияние минеральной основы питательной среды и ее концентрациина высоту микропобегов сортов вишниThe influence of mineral composition of the nutrient medium and it’s concentration on the height of microshoots of sour cherry explants  Экспланты, высаженные на питательные среды ½QL и ½MS, статистически не различались по высоте микропобегов (11,6–12,2 мм). Микропобеги вишни, полученные на питательных средах MS и QL с полной концентрацией макросолей, характеризовались максимальной высотой и существенно не различались по данному показателю друг от друга (18,5–19,4 мм). Результаты исследования согласуются с работой М.Г. Марковой: микропобеги C. fruticosa и P. domestica, культивируемые на питательных средах QL и MS, были одинаковой высоты [31]. В работе Nazar AL Ghasheem и др. (2022) наблюдали большую высоту у микропобегов сортов Prunus persica L. на среде MS по сравнению с QL [29]. Различная реакция представителей Prunus на минеральный состав питательной среды на этапе собственно микроразмножения показывает видо- и сортоспецифичность, из-за которой требуется оптимизация протоколов для культивирования новых генотипов. Таким образом, питательные среды QL и MS с полной концентрацией макросолей были эффективны для клонального микроразмножения изучаемых генотипов.Цитокинины в составе питательной среды способствуют реализации морфогенетического потенциала растения и определяют направление органогенеза в культуре in vitro. В ходе двухфакторного дисперсионного анализа установлена существенная разница по биометрическим параметрам между эксплантами вишни, культивируемыми на питательных средах с различными регуляторами роста (табл. 2).  Таблица 2Влияние регуляторов роста на биометрические параметры эксплантов вишни (2023, 2024 гг.)The influence of growth regulators on biometric parameters of sour cherry explants (2023, 2024) Регулятор роста, мг/лЧисломикропобегов, шт.Высотамикропобегов, ммКоэффициент размножения0,3 БАП5,2±0,3a17,1±0,8c8,4±0,6a0,3 мТ2,3±0,2d25,6±0,7a5,0±0,6bc0,5 БАП2,1±0,2d19,0±0,8bc4,0±0,5cd0,5 мТ1,1±0,1e23,2±0,8a2,5±0,5d0,5БАП+0,3мТ4,1±0,2ab24,5±0,9a8,0±0,7a0,5мТ+0,3БАП2,7±0,2c20,9±0,8ab6,0±0,6b Наибольшее число микропобегов экспланты вишни образовывали при культивировании на питательных средах с добавлением 0,3 мг/л 6-БАП ((5,2 ± 0,2) шт.). Увеличение концентрации 6-БАП до 0,5 мг/л ингибировало развитие микропобегов ((2,1 ± 0,2) шт.). Для повышения эффективности клонального микроразмножения требуется индивидуальный подбор концентрации цитокинина. Добавление 6-БАП в питательную среду способствовало развитию адвентивных микропобегов. Однако повышенная концентрация 6-БАП в составе питательной среды может угнетать рост и развитие экспланта из-за накопления его метаболитов в тканях растения [20]. Добавление 0,3 мг/л мТ к 0,5 мг/л 6-БАП в питательной среде способствовало увеличению числа микропобегов ((4,1 ± 0,2) шт.). Некоторые исследователи указывали на положительное влияние на размножение растения in vitro при совместном использовании нескольких регуляторов роста в составе питательной среды [32]. Культивирование эксплантов на питательной среде только с мТ или в случае, где концентрация мТ больше, чем другого цитокинина, понижало число микропобегов. Снижение морфогенетического потенциала при культивировании на питательных средах с мТ отмечено в работах и у других ученых [33, 34].Высота микропобегов вишни была значительно выше на питательных средах, содержащих мТ: максимальная высота отмечена при добавлении 0,3 мг/л мТ и 0,5 мг/л БАП совместно с 0,3 мг/л мТ ((25,6 ± 0,7) и (24,5 ± 0,9) мм соответственно). Минимальную высоту микропобегов наблюдали при культивировании эксплантов на питательных средах с 0,3 ((17,1 ± 0,8) мм) и 0,5 мг/л ((19,0 ± 0,8) мм) 6-БАП. Высота микропобегов важна как для микроразмножения, так и для последующего укоренения регенерантов. Некоторые сорта вишни характеризуются укороченными междоузлиями. В свою очередь, в научной литературе есть работы, в которых описано положительное влияние мТ на высоту микропобегов и их морфологическое состояние. При культивировании сортов Actinidia arguta (Siebold et Zucc.) Planch. et Miq., Actinidia kolomikta (Rupr. Et Maxim.) Maxim, а также Amelanchier alnifolia Nutt. на питательной среде с добавлением мТ высота микропобегов была в 1,3–1,4 раза больше по сравнению с вариантом с 6-БАП [35, 36].Наибольший коэффициент размножения у изучаемых сортов вишни получен на питательных средах с 0,3 мг/л 6-БАП (8,4 ± 0,6) и 0,5 мг/л БАП совместно с 0,3 мг/л мТ (8,0 ± 0,7). Наименьший коэффициент размножения отмечен на питательной среде с 0,5 мг/л мТ (2,44 ± 0,33). Максимальная реализация морфогенетического потенциала достигнута на питательной среде с 0,3 мг/л 6-БАП за счет оптимальной концентрации регулятора роста, индуцирующего активный рост и развитие адвентивных микропобегов. При этом питательная среда с 0,5 мг/л БАП и 0,3 мг/л мТ способствовала развитию адвентивных микропобегов и последующее увеличение их высоты.Таким образом, на этапе собственно микроразмножения эффективными регуляторами роста являются 0,3 мг/л 6-БАП или 0,5 мг/л БАП совместно с 0,3 мг/л мТ.Этап укоренения. Этап укоренения важен для клонального микроразмножения. Установлены статистически значимые различия по биометрическим параметрам эксплантов различных сортов вишни в зависимости от генотипа, минеральной основы питательной среды и ауксинов (табл. 3). Таблица 3Влияние минерального состава питательной среды и ауксиновна биометрические параметры эксплантов вишни (2023, 2024 гг.)The influence of mineral composition of the nutrient medium and auxinson the biometric parameters of sour cherry explants (2023, 2024) СортМинеральная основа питательной средыРегуляторроста, мг/лУкореняемость, %Числокорней, шт.Длинакорней, мм123456‘Carmine Jewel’½QL0,5 ИУК33b1,6±0,3a42,3±9,8a0,5 ИМК71a2,7±0,3a49,7±4,1a½MS0,5 ИУК42b2,1±0,3a 30,0±2,5a0,5 ИМК75a2,4±0,5a 46,5±5,6aОкончание табл. 3123456‘Valentine’½QL0,5 ИУК27ab1,8±0,8a22,6±6,2ab0,5 ИМК8c0,7±0,9a4,3±2,8b½MS0,5 ИУК11bc1,1±0,6a27,7±5,5ab0,5 ИМК33a1,7±0,4a36,2±5,6a‘Cuiped’½QL0,5 ИУК0d––0,5 ИМК2c––½MS0,5 ИУК4b––0,5 ИМК29a2,9±0,4a38,6±4,3aПамятиЛевандовского½QL0,5 ИУК69a4,2±0,5a18,1±2,4a0,5 ИМК9c0,3±0,3c14,7±4,7a½MS0,5 ИУК40b1,9±0,4b30,3±5,6a0,5 ИМК29bc2,7±0,4b29,5±4,1a  Сорта вишни по укореняемости можно расположить от наименьшего значения к большему в следующем порядке: ‘Cupide’ (10 %), ‘Valentine’ (21), Памяти Левандовского (34), ‘Carmine Jewel’ (48 %).Культивирование эксплантов на питательной среде ½MS способствовало максимальному проценту укоренившихся микропобегов (33 %) по сравнению с питательной средой ½QL (28 %), однако статистически значимых различий не было установлено. Многие исследователи успешно укореняли микропобеги различных представителей рода Prunus на питательной среде как с минеральной основой MS, так и QL [26, 37].Наиболее эффективным ауксином для укоренения большинства изучаемых в опыте сортов вишни является 0,5 мг/л ИМК (35 %) по сравнению с 0,5 мг/л ИУК (18 %). Эти данные согласуются с работами других ученых, где ИМК в различных концентрациях способствовала ризогенезу косточковых культур in vitro [37, 38]. Однако микропобеги сорта Памяти Левандовского характеризовались большим процентом укоренения на питательной среде с добавлением 0,5 мг/л ИУК (48 %). Это можно объяснить тем, что одной из родительских форм сорта Памяти Левандовского являлся C. maakii, считающийся легкоукореняемым видом [39].Генотип растения повлиял на число корней у эксплантов вишни. У микропобегов сортов ‘Carmine Jewel’ и Памяти Левандовского число корней варьирует в пределах 2,2–2,3 шт., а у ‘Valentine’ – 1,3 шт.В свою очередь, на длину корней влияли минеральная основа питательной среды и применяемый ауксин. Питательная среда ½MS с добавлением 0,5 мг/л ИМК способствовала образованию более длинных корней у микропобегов ((38 ± 5,5) мм) по сравнению с другими вариантами питательных сред. Создание различных стрессовых условий на короткий промежуток времени может способствовать активации ризогенеза. В ходе однофакторного дисперсионного анализа установлено значительное влияние режимов культивирования на укореняемость микропобегов вишни ‘Carmine Jewel’ (рис. 4).Помещение микропобегов на 7 дней в условия с температурой 15 °С и освещенностью 1500 Лк (вариант В) способствовало увеличению укореняемости на 10 % в сравнении с контрольным вариантом (Г). Снижение освещения до 500 Лк на 7 дней снижало процент укоренившихся микропобегов вишни (вариант А и Б). Это может быть связано с тем, что для индуцирования ризогенеза требуется полное отсутствие света, а не понижение освещенности [40]. Кратковременное понижение температуры оказало положительный эффект на рост и развитие корней у эксплантов, что согласуется с данными других авторов [41, 42].Экспланты вишни, культивируемые в различных условиях, статистически не различались по числу и длине корней. Стоит отметить, что сохранение освещенности на уровне 1500 Лк способствовало образованию большего числа корней и увеличению их длины (рис. 5).    Рис. 4. Влияние режимов культивирования в течение 7 дней на последующую укореняемость микропобегов ‘Carmine Jewel’: А – 500 Лк + 15 °С; B – 500 Лк + 25 °С; C – 1500 Лк + 15 °С; D – 1500 Лк + 25 °СEffect of cultivation regimes for 7 days on subsequent rooting of ‘Carmine Jewel’ microshoots:A – 500 Lx + 15 °С; B – 500 Lx + 25 °С; C – 1500 Lx + 15 °С; D – 1500 Lx + 25 °С   Рис. 5. Влияние режима культивирования на число корней микропобегов сорта ‘Carmine Jewel’: А – 7 дней при освещенности 500 Лк и температуре 15 °С; Б – 7 дней при 1500 Лки температуре 15 °СEffect of cultivation mode on the number of roots in microshoots of ‘Carmine Jewel’: A – 7 days at 500 Lx illumination and 15 °С temperature; B – 7 days at 1500 Lx and 15 °С temperature  Таким образом, на укореняемость изучаемых сортов вишни в большей степени влияло понижение температуры при культивировании, чем уменьшение освещенности.Этап адаптации. Этап адаптации является заключительным этапом получения посадочного материала методом клонального микроразмножения. В ходе дисперсионного анализа установлены статистически значимые различия между регенерантами сортов вишни (табл. 4). Таблица 4Влияние генотипа и состояния корневой системы у микропобегов на параметры растений вишни в условиях ex vitro (2023, 2024 гг.)The influence of genotype and microshoots root system condition on the parametersof sour cherry plants ex vitro (2023, 2024) ПоказательСорт‘Carmine Jewel’‘Valentine’Памяти Левандовскогос корнямибез корнейс корнямибез корнейс корнямибез корнейПриживаемость, %67bс64c89a83a80b78bПрирост побега, мм18,1±0,3a12,9±0,4c15,3±0,5a12,2±0,4c13,5±0,4b13,3±0,8b  Сорт ‘Valentine’ характеризовался наибольшим процентом выживших растений на этапе адаптации (89–83 %). Средний показатель приживаемости растений установлен у сорта Памяти Левандовского (80–78 %), а минимальный – у сорта ‘Carmine Jewel’ (67–64 %). Процент выживших на этапе адаптации регенерантов с корнями выше на 3–6 % у сортов ‘Carmine Jewel’ и ‘Valentine’ по сравнению с микропобегами без корней. В свою очередь, процент адаптированных растений у сорта Памяти Левандовского не зависел от наличия корней у микропобегов (78–80 %). Наличие корневой системы у регенерантов сортов ‘Carmine Jewel’ и ‘Valentine’ способствовало выходу растений из состояния покоя сразу после этапа адаптации и развитию нового побега из апикальной почки. В то же время состояние корневой системы у регенерантов сорта Памяти Левандовского существенно не влияло на длину прироста после адаптации к условиям ex vitro.Таким образом, показана важность этапа укоренения при клональном микроразмножении сортов ‘Carmine Jewel’ и ‘Valentine’.Заключение. В ходе исследования установлено, что питательные среды Murashige-Skoog и Quoirin-Lepoivre с полной концентрацией макросолей эффективны для клонального микроразмножения изучаемых сортов вишни (коэффициент размножения 6,7–7,2). 6-БАП в концентрации 0,3 мг/л или сочетание 0,5 мг/л 6-БАП совместно с 0,3 мг/л мТ в составе питательной среды способствует реализации морфогенетического потенциала изучаемых сортов вишни.На этапе укоренения оптимальна питательная среда ⅟₂MS с добавлением 0,5 мг/л ИМК для большинства изучаемых генотипов (укореняемость 35 %). Для увеличения укореняемости вишни in vitro рекомендуется предварительное культивирование микропобегов в течение 7 дней при температуре 15 °С и освещенности 1500 Лк.Для успешной адаптации регенерантов сортов ‘Carmine Jewel’ и ‘Valentine’ необходим этап укоренения. Для повышения экономической эффективности технологии клонального микроразмножения вишни Памяти Левандовского можно совмещать этап укоренения и этап адаптации.